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标题: [讨论帖]“细胞培养心得 [打印本页]

作者: ritou1985    时间: 2012-4-16 12:52     标题: [讨论帖]“细胞培养心得



养细胞有3年了吧,虽然最近不用我接手了。从一开始跟师傅学,到最后有了自己的养细胞方法,经历很多挫折,也收获了把细胞养好的喜悦,
从做徒弟开始,可以很荣幸的说,到现在从没又把细胞污染过,从悬浮,贴壁,半贴壁。最后总结出一句话“养细胞就跟养孩子一样”,你不用心传的话,两天就会长得乱七八糟。记得一开始做鸡纤维细胞,两个鸡胚铺的细胞都长不满,做试验根本没法做,好歹连续做了两个周,才掌握了方法,板底铺的正好。
细胞做多了,他也就熟悉你的脾性,你也就熟悉他的脾性了,嘿。。。还是那句话“养细胞要跟养孩子一样”O(∩_∩)O哈!

作者: 33号    时间: 2012-4-16 12:54

记得养细胞是在5年前,经常要换液,我的一个师兄忙毕业论文,我这个人也是闲着没事干,就接下了这个任务。因为每次细胞出现不贴壁,就打电话给师兄来处理。
后来到一家公司,我们也进行细胞培养。主要进行一个产品的活力测定。由于这个产品在市场上基本是独家销售,利润空间很大。但是出于其他方面的考虑,生产的批次还是较少的,活力测定很少测定,后来药检所要抽样检验。当时药检所也没有专门的细胞活力测定的实验室,所以就要到我们公司进行试验。
于是试验就在公司开展,由于这边基本上不做这个实验,买耗材和试剂成了一个很大的麻烦,因为很多试剂代理商看到这些实际量少以及种类较多,基本上都是回绝了。郁闷,但是在我原来的实验室通过关系“免费赞助”了一批。试验终于开展起来了。
试验终于开展起来了,药检所来了一个漂亮妹妹来监督试验,晕!她不做实验,而是监督。由于刚开始做,首先是细胞的解冻接种培养,不是不贴壁,就是不生长,郁闷!她也鼓励我们说细胞培养是很难,她曾经在学校培养了半年的细胞才最后进行试验的,她主要是培养神经细胞的。后来向师兄打听,说神经细胞是很难培养的。也就是说她是一个高手啊!
既然有高手,就有压力以及有一个好的老师在旁边。试验开展到最后活力测定了。在试验最后一步,看到细胞染色的情况,真是让我冷汗差一点出来了。后来进行酶标仪读数时看到有一些数字和空白值一样,真是悬啊!如果试验失败那就是公司要召回产品,损失惨重啊!随着扫描读数结束,心终于落地了,试验结果很好!那个药监局妹妹说我们操作很好!
我们的产品最好终于放行了,老板也没有提出奖励,感觉是应该的。接着我们继续剩勇追穷寇进行了其他品种的细胞活力测定,并着重进行培训。现在细胞培养几个人终于可以很熟练的操作了。

作者: caihong    时间: 2012-4-16 12:54


细胞培养做了很多年,遇到最多的麻烦就是长菌。
个人体会:
1.见好就收
如果细胞状态好,赶紧冻存一批。当出现污染或细胞长得不好时,可以重新复苏细胞,从头再来。
2.时刻保持低调
细胞出现污染往往在自我感觉越来越好的时候,千万不要骄傲。认认真真做好每一天的工作。
3.细节决定成败
细胞培养的每一个环节出现问题都有可能影响到细胞的生长,不能放松。

作者: lixi559    时间: 2012-4-16 12:55


痛并快乐的养了好几年细胞了,污染数不胜数啊~
我养的细胞污染过:霉菌—长得像朵蒲公英,漂亮啊~~可惜长在了我得培养皿里。
放线菌:有很长的丝,是放线菌吧?
细菌:细细黑黑的,还会游动,一天就长满了。好恶心
不知道什么的菌: 黑色的流沙状的,好象我还在这儿问过。
大部分情况下,污染了赶紧扔,别影响其他细胞就行。污染主要是操作的问题,如果担心培养液有问题,可以取一点放在新的35mm小皿里,在培养箱放一天看看。或者1:1加LB培养基,37度摇床过夜检测。
霉菌我试过挽救,挑出去换液,不过没去干净,第二天四处开花,只好扔了。
流沙状的那种污染,我用PBS洗了好多遍,种在96孔板里,长是长起来了,快长满6孔板的时候突然又满孔流沙淹没细胞了。看来,这个方法也没用,以后可以直接仍了。
总之,污染之后挽救,远如不操作的时候小心,需要的东西在超净台里准备好照上,总拿进拿出容易把外面空气里的菌带进去。还有东西位置规划好,别把袖子在需要无菌的东西上面晃来晃去。

作者: glass    时间: 2012-4-16 12:56

细胞真是个头疼的玩意~~当初是为了帮师姐的忙,才进的实验室。对分子生物一点不感兴趣,却喜欢上了培养细胞,可是这确实最大的考验。
细胞培养的前期工作很长,小鼠,培养基,灭菌......实验进行也只是短短的几小时,可是花费在前期工作的时间确实无法计算的。当一切准备就绪,也可能一点的疏忽让所有的细胞无法生长~~~
当初冻存小鼠成纤维细胞实验已经成型,可是有一天开始突然复苏细胞的生长状态很不好,我寻找了一年的时间改进方法,终于把冻存液配方以及冷冻程序改良后才恢复原来的状态。这里也把我的冷冻方法告诉大家一下吧:胎牛血清:DMSO=9:1,四度冷冻30min,-20度冷冻1小时,转到-70度,过夜第二天存入液氮中。也可以选择程序冷冻盒,但是感觉没有这个效果好呢。
记得有几个月我培养的细胞都没有菌生长,实验室其他人的细胞都不同程度的长菌,而且他们长菌的细胞给我,我也能挽救回来。就这样自己就飘飘然了,和老师夸口说自己养细胞从来没长过菌。可仅仅是第二天,和同学喝的迷糊的就去做实验了,自己感觉喝的还不算多,可是手却发抖了。果然可怜的293GP就被我弄得不像胞样了~~全是菌样~~哈哈!
细胞这个孩子还得住的好地方~~我们实验室以前一直用一个红色盖子的培养瓶,7元一个,也不便宜~~可是后来用了一个蓝色BD的培养瓶,这些细胞就喜欢上BD的了~再用以前红色培养瓶就不好养了,真是奇怪~~有时候用BD的瓶子装点胎牛血清,可是感觉那个瓶子是不是太好了,可能有透气性,喷喷酒精就发现血清颜色不正常了~~弄得细胞很久都吃不好~唉!
有的时候为了避免长菌,自己就使劲往手上喷酒精,然后再戴手套再喷,可是又一次竟然用了工业酒精,杂质超多,弄得手感觉火辣辣的难受~~唉,也没有工伤钱,可怜的细胞人!
就是这样的我们成就了中国的生物产业~就是这样的我们才能让BOSS发出SCI,不知道什么时候才是我们这样人的天下,愿所有养细胞的人都能顺利,不长菌,满贴壁,形态好,多发SCI!!

作者: greenbee    时间: 2012-4-16 12:57


我养细胞也两年多了,刚开始的时候很痛苦,啥也不会,很多东西都没有见过,很迷茫,没开始一个新实验都要紧张好几天。在这种情况下,在实验之前往往需要查阅大量的资料。对整个实验的原理,操作细节都要在头脑里反复演练几遍。在过去的两年中,我基本都是这样过来的。以我养EPC的经历为例,什么时候第一次细胞换液?针对这个问题,我看了很多文献,各个文献的说法很多不一样,从中我了解了EPC换液的一些情况,然后有了一些自己的经验。同样,关于单个核细胞的接种密度的问题,我也是查了很多的资料,最后才有了自己的经验。我的实验也取得了成功。那是相当的喜悦!------准备要充分!

当然,我也有失败的时候。有一次,自己想偷懒,将原代培养-传代培养-细胞换液同时做了,当时超净台上也是一团糟,结果那批细胞全部给污染了,直接的结果就是2个月的劳动全部白费了。当时实在是太郁闷了!那次的教训告诉我,就是实验一定要注意细节,不要心急!--要有耐心,要注意细节!

要多听听别人的意见,但是别人的意见不一定正确,要自己摸索和思考,要多阅读!

作者: 一叶    时间: 2012-4-16 12:57


我进实验室的第一件事就是进行的细胞培养,到目前为止,已经8个年头了。中间确实经历了坎坷和喜悦。要知道,如果你的细胞成为大家参观和崇拜、学习的对象,那是多么自豪的一件事。
下面将我这几年来样细胞的经历和感想跟大家交流一下。
1、启蒙老师的重要性。父母是人生的第一/最好导师,说明了启蒙老师的重要性,尤其是在孩子的教育上。细胞培养也是如此。一般进实验室都有师兄带着做,师兄就是你做细胞的启蒙老师。他的操作手法、细节、理论讲解就成了你操作的准则,如营养液、细胞瓶的摆放位置;灭菌处理程序;开盖手法;细胞吹打手法等等。俗话说,名师出高徒,强将手下无弱兵,就是这个道理。第一次最重要!
2、永恒的细心和耐心。开始做细胞,在师兄的带领下,一般在细节上都很注意,细胞一般也长的不错。然后就有点飘飘然,自认为不也就这么容易嘛。然后就会放松警惕和要求,后果马上就会出来了。轻则细胞状态不好,重则细胞污染,营养液污染。
3、好细胞要及时保种。刚开始做细胞,有些问题不是很懂。有一次,老板从别处拿来一瓶细胞,让我培养。状态非常好,我就一直传代,都有十几瓶了,后来由于失误,结果全部细胞都污染了。结果可想而知——一顿很批。也许早问一下,早冻存也不会出现这种情况。还有当时嫌麻烦,老板说过多次,细胞要分批传代,这样即使有一批出了问题,还有一批备用的。像后者一般人可能不容易做到。尤其实验室超净台紧张、利用率高的情况下。
4、特殊情况下更需注意。细胞培养时间长了,人总会有点自以为是,飘飘然。有一次,晚上那个喝了点酒,因为第二天要转染,所以,晚上要把细胞传代一下。自以为没事,传个细胞还不容易。结果第二天就污染了。就像前面战友提到的情况。当时多亏还有其他没有传代的细胞。
5、每种细胞都有自己的特性,要区别对待。细胞跟人一样,不同的细胞,培养特性是不一样的。培养过程中要细细体会。不同细胞株使用不同的培养基和血清。如高糖/低糖DMEM、胎牛血清、新生牛血清、马血清、含/无丙酮酸钠、RPMI-1640等。
6、培养前的工作准备充分。包括耗材的处理、试剂的配置,无菌检验等等。
(1)玻璃器皿的清洗。对于玻璃器皿(细胞瓶、装营养液的瓶子、小青霉素瓶等)要先用洗衣粉刷干净(注意死角),然后冲干净。用酸液浸泡24h以上,之后用清水冲洗10遍,除去残留酸液。瓶子之类,冲洗过程要使劲摇晃。然后在双蒸水浸泡24h。晾干后包扎,160度干烤2h待用。
(2)试剂配置。细胞培养用的液体一般使用双蒸以上的水即可。并注意pH值的调节。
(3)无菌检验。主要采用过滤除菌:如胰酶、抗生素、G-418溶液、各类培养基、丙酮酸钠、谷氨酰胺等。有些可以采用高压灭菌:如PBS、D-Hank's等。
7、试剂分装保存。包括营养液、胰酶、血清等。
血清特别重要。血清必须贮存于–20℃,如果一次无法用完一瓶,可将40~50ml 分装于无菌酸处理瓶中,甚至置青霉素瓶保存。
一般厂商提供之血清为无菌,不需再无菌过滤。若发现血清有许多悬浮物,则可将血清加入培养基内一起过滤,勿直接过滤血清。(一般情况下不影响细胞培养)
瓶装血清一定要逐步解冻: 4℃冰箱全溶后再分装,在溶解过程中须规则摇晃均匀(小心勿造成气泡),使温度与成分均一,减少沉淀的发生。勿直接由–20℃直接至37℃解冻,因温度改变太大,容易造成蛋白质凝结而发生沉淀。
热灭活是指56℃, 30 分钟加热已完全解冻之血清。水浴锅升到56度后,将血清放入,待温度升高到56度后计时,一般5分钟左右规则摇晃均匀一次。此热处理之目的是使血清中之补体成份 去活化。除非必须,一般不要作此热处理,因为会造成沉淀物之显著增多,且会影响血清之品质。注意更换新血清(包括不同批次)对细胞的影响。
8、细节决定成败。实验进行前,超净台以紫外灯照射30分钟灭菌,以70 %ethanol 擦拭无菌操作抬面,并开启超净工作台风扇运转数分钟后,才开始实验操作。
每次操作只处理一株细胞株,以避免失误混淆或细胞间污染。实验完毕后,将实验物品带出工作台,以70 % ethanol 擦拭无菌操作抬面。
无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞,必要物品,例如支架、吸管等公用物品可以暂时放置,其它个人实验用品用完应立即拿出。实验用品以70%乙醇擦拭后才带入无菌操作台内。实验操作应在中央无菌区域,一般勿在边缘区域操作。
小心取用无菌之实验物品,避免造成污染。勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口,亦不要在打开之容器正上方操作实验。容器打开后,以手夹住瓶盖并握住瓶身,倾斜约45° 角取用,尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。
9、注意安全。包括泡酸处理,超净台的酒精灯、打火机。
10、多问、多看、多思考、多改进、多总结。

作者: 831226    时间: 2012-4-16 12:58

细胞培养做了很多年,遇到最多的麻烦就是长菌。
个人体会:
1.见好就收
如果细胞状态好,赶紧冻存一批。当出现污染或细胞长得不好时,可以重新复苏细胞,从头再来。
2.时刻保持低调
细胞出现污染往往在自我感觉越来越好的时候,千万不要骄傲。认认真真做好每一天的工作。
3.细节决定成败
细胞培养的每一个环节出现问题都有可能影响到细胞的生长,不能放松。

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说得好
作者: kulee    时间: 2012-4-16 12:58

我养细胞已经4年了,现在还在养!
刚进实验室的时候,连枪都不会用,打电话问师姐,现在想想很好笑!
我的经验是,养细胞非常需要经验!
首先是培养液,尤为关键,吃的不好,细胞是不会长好的!所以不要在这方面省钱,GIBCO的血清和瓶装培养液还是不错的,这么多年一直用它;
其次是培养瓶和培养板,个人觉得CONING的还不错!
细胞这东西,要大胆而心细,需要每天想着它,但也要给它时间,我们要耐得住性子,平和心态。只要坐在超净台前,就要一切准备工作就绪,绝不能手忙脚乱,尤其在原代培养时,而且建议一次只做一种细胞株的原代培养。(我曾经一次做了9只猪胎儿的成纤维细胞培养,累的半死,只活2只猪的,其余的都污染)细胞冻存之前,一定要预留培养,避免发生冻存失败而前功尽弃。

作者: sunnyB    时间: 2012-4-16 12:59


说起养细胞,我还只是个新手,到现在10个月了,养过PC12和SP2/0,相对来说还是好养的。
养细胞最重要的就是请教经验~不是网上查查的方法马上就可以用上的,总是尝试许久,得到适合自身实验室的条件的方法才能成的,所以养细胞的苦楚,只有我们这些细胞人才体会的到~~

细心是最最重要的,污染往往就是一个不留神~另外千万不要抱侥幸心理,如果可以,尽量多换枪头,换玻璃管什么的,一但有问题,后果很严重~

最后祝所有养细胞的朋友们顺利!

作者: milkdog    时间: 2012-4-16 12:59


养细胞的时间不算很长,如果把时间一分为二的话,可以说前一半时间是在养,机械的操作,后一半时间是在学习,在查找中思考,在思考中进步!

前一半时间,只是根据前人的经验,比葫芦画瓢的配液、配酶、养细胞、标细胞、种细胞、鉴定细胞……,不敢去或者没有时间去怀疑,毕竟刚开始接触实验,一切都是新的,想把每一个问题都搞清楚,而要学的东西太多太多了,作为一个追求完美的人,我迷失了自己,在焦虑中煎熬,而此时养细胞又有人教,也就没有深究。

直到有一天我发现前人的过滤器使用方法压根就不对头的时候,而实验依然在继续的时候,我突然醒悟,以前自己太急了,而做实验又是不能急的一件事,需要去思考,需要去准备,充分的准备,尽可能的思考每一个步骤,每一个细节。而这时,时间已经过去了大半,没有毕业答辩也在情理之中了。

于是,痛定思痛,一切从头再来。

酶的作用是什么,胰酶的作用是什么,胶原酶的作用什么,为什么用1型不用3型,为什么加入透明质酸酶,为什么混匀细胞的时候要十字交叉的摇而不是顺时针或者逆时针摇,为什么要放入培养箱的时候要拧松瓶口,而拿出时要拧紧,为什么孵育箱要加水,加什么水,怎么样加,多长时间加一次,每次加多少,为什么要用co2培养箱,而且浓度还必须是5%,为什么小滤器使用前后要检漏,最多一次能虑多少,针式的还要看保质期,为什么选择dmem-f12培养基,而不选dmem或者1640或其他的,为什么选择无噬菌体的胎牛血清而不选择无支原体的,为什么选择而不选择新生牛或小牛呢?为什么自己的血清要灭火,而他人的不需要呢?为什么抗体分装的时候最少要10ul,为什么多聚甲醛固定的组织要抗原修复,而丙酮固定的就不需要,但同样是多聚甲醛固定的组织为什么石蜡的需要修复,而爬片却不需要修复呢,为什么血清在灭火之前要经历从-20到4度到室温再到37度水域呢,为什么要分装血清呢,为什么这个二抗需要用血清进行封闭而pv9005就不需要呢,为什么要用二抗来源的血清封闭,其他来源的行不行……,太多太多的为什么,也知道不能每一个都解决,那就尽可能尽自己最大的努力去准备,知道试验不得不开始,因为世上没有完美的事情!

直到今天,我又准备了快3个月了,但是仍然觉得不充分,实验还没有开始,不能再拖了,下周一定开始养细胞!

衷心的告诫养细胞的新手们,要思考,要讨论,要问为什么,思考和讨论是一个科研工作者必须要学会的事情,虽然不可能每一个想到的为什么都会有答案,但是尽力就行了。

我的座右铭:不求尽如人意,但求无愧于心,但是要真的是无愧于心。

和大家共勉!!

作者: october7    时间: 2012-4-16 13:00


养细胞的时间不算很长,如果把时间一分为二的话,可以说前一半时间是在养,机械的操作,后一半时间是在学习,在查找中思考,在思考中进步!

前一半时间,只是根据前人的经验,比葫芦画瓢的配液、配酶、养细胞、标细胞、种细胞、鉴定细胞……,不敢去或者没有时间去怀疑,毕竟刚开始接触实验,一切都是新的,想把每一个问题都搞清楚,而要学的东西太多太多了,作为一个追求完美的人,我迷失了自己,在焦虑中煎熬,而此时养细胞又有人教,也就没有深究。

直到有一天我发现前人的过滤器使用方法压根就不对头的时候,而实验依然在继续的时候,我突然醒悟,以前自己太急了,而做实验又是不能急的一件事,需要去思考,需要去准备,充分的准备,尽可能的思考每一个步骤,每一个细节。而这时,时间已经过去了大半,没有毕业答辩也在情理之中了。

于是,痛定思痛,一切从头再来。

酶的作用是什么,胰酶的作用是什么,胶原酶的作用什么,为什么用1型不用3型,为什么加入透明质酸酶,为什么混匀细胞的时候要十字交叉的摇而不是顺时针或者逆时针摇,为什么要放入培养箱的时候要拧松瓶口,而拿出时要拧紧,为什么孵育箱要加水,加什么水,怎么样加,多长时间加一次,每次加多少,为什么要用co2培养箱,而且浓度还必须是5%,为什么小滤器使用前后要检漏,最多一次能虑多少,针式的还要看保质期,为什么选择dmem-f12培养基,而不选dmem或者1640或其他的,为什么选择无噬菌体的胎牛血清而不选择无支原体的,为什么选择而不选择新生牛或小牛呢?为什么自己的血清要灭火,而他人的不需要呢?为什么抗体分装的时候最少要10ul,为什么多聚甲醛固定的组织要抗原修复,而丙酮固定的就不需要,但同样是多聚甲醛固定的组织为什么石蜡的需要修复,而爬片却不需要修复呢,为什么血清在灭火之前要经历从-20到4度到室温再到37度水域呢,为什么要分装血清呢,为什么这个二抗需要用血清进行封闭而pv9005就不需要呢,为什么要用二抗来源的血清封闭,其他来源的行不行……,太多太多的为什么,也知道不能每一个都解决,那就尽可能尽自己最大的努力去准备,知道试验不得不开始,因为世上没有完美的事情!

直到今天,我又准备了快3个月了,但是仍然觉得不充分,实验还没有开始,不能再拖了,下周一定开始养细胞!

衷心的告诫养细胞的新手们,要思考,要讨论,要问为什么,思考和讨论是一个科研工作者必须要学会的事情,虽然不可能每一个想到的为什么都会有答案,但是尽力就行了。

我的座右铭:不求尽如人意,但求无愧于心,但是要真的是无愧于心。

和大家共勉!!

被你的为什么完全弄晕了。。。基本都不大知道。。。

作者: hot_hot_hot    时间: 2012-4-16 13:01

我养细胞还是新手,经历也比较痛苦
前段时间帮师姐养K562细胞,结果长虫了,一下丢了12皿。心都碎啦。
最近自己的实验要养K562细胞,结果细胞状态不好,背景不干净。丢掉了。这下真像丢了自己的孩子,一整天都魂不守舍。我可就这么一皿啊。
我想都是自己操作不行,从头跟师姐学起,会有快乐的一天的

作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:01

细胞计数与存活测试
1. 原理:
1.1. 计算细胞数目可用血球计数盘或是Coulter counter 粒子计数器自动计数。
1.2. 血球计数盘一般有二个chambers,每个chamber 中细刻9 个1 mm2 大正方形,
其中4 个角落之正方形再细刻16 个小格,深度均为0.1 mm。当chamber 上方
盖上盖玻片后,每个大正方形之体积为1 mm2 x 0.1 mm=1.0 x 10-4 ml。使用时,计
数每个大正方形内之细胞数目,乘以稀释倍数,再乘以104,即为每ml 中之细胞
数目。
1.3. 存活测试之步骤为dye exclusion,利用染料会渗入死细胞中而呈色,而活细胞因细
胞膜完整,染料无法渗入而不会呈色。一般使用蓝色之trypan blue 染料,如果细
胞不易吸收trypan blue,则用红色之Erythrosin bluish。
2. 材料:
2.1. 0.4 % w/v trypan blue (GibcoBRL 15250-061)
2.2. Erythosin bluish stain
取0.1 gram Erythrosin bluish (Sigma E-9259) 及0.05 gram preservative methyl
paraben (Sigma H-3647) 溶于100 ml Ca++/Mg++ free saline
2.3. 血球计数盘及盖玻片(Hemocytometer and coverslip)
2.4. 计数器(counter)
2.5. 低倍倒立显微镜
2.6. 粒子计数器(Coulter counter, Coulter Electronics)
3. 步骤:
3.1. 取50ml 细胞悬浮液与50ml trypan blue (or Erythrosin bluish) 等体积混合均匀于
1.5ml 小离心管中。
3.2. 取少许混合液(约15ml) 自血球计数盘chamber 上方凹槽加入,盖上盖玻片,于
100 倍倒立显微镜下观察,活细胞不染色,死细胞则为蓝色(或红色- Erythrosin
bluish)。
3.3. 计数四个大方格之细胞总数,再除4,乘以稀释倍数(至少乘以2,因与trypan blue
等体积混合),最后乘以104 ,即为每ml 中细胞悬浮液之细胞数。若细胞位于线
上,只计上线与右线之细胞(或计下线与左线之细胞)。
4 大格*细胞总数x 2 x 104 / 4= 细胞数/ml
*每一大格的体积= 0.1cm x 0.1cm x 0.01cm = 10-4 ml
3.4. 若不用血球计数盘,可用Coulter counter 作自动计数,惟无法辨别死细胞或活细
胞。
3.5. 范例:
T75 monolayer culture 制成10ml 细胞悬浮液,取0.1 ml 溶液与0.1ml trypan
blue 混合均匀于试管中,取少许混合液加入血球计数盘,计数四大方格内之
细胞数目。
活细胞数/方格:55 ,62, 49, 59
死细胞数/方格:5, 3, 4, 6
细胞总数= 243
平均细胞数/方格= 60.75
稀释倍数= 2
细胞数/ml:60.75 x 104 x 2 = 1.22 x 106
细胞数/flask: 1.22 x 106 x 10ml = 12.2 x 106
存活率:225/243﹦92.6 %
贴壁细胞传代-消化过程图示
贴壁细胞细胞在培养瓶长成致密单层后,继续生长的空间不足,培养基中的营养成份也消耗较多,同时代谢废物也有较多堆积,需要分瓶培养,对细胞进行传代扩增。
对于贴壁不太紧的细胞如293,可以直接吹散后分瓶。而对于贴壁较紧的细胞如CHO,则需要以胰酶消化后再吹散分瓶,一般过程为 (以下操作均按无菌操作的要求进行):
将长成致密单层细胞的细胞瓶中原来的培养液弃去;
加入0.25%胰酶溶液,视细胞瓶的大小加入体积为0.5ml或更多,以使充分浸润;
一般消化时间约为1至3分钟,肉眼观察瓶壁半透明的细胞层,当见到出现细针孔空隙时,弃去胰酶溶液,并加入适量的细胞培养液终止消化;

作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:02

视实验要求分入多瓶继续培养,一般为一传二到一传四的比例。
这里,胰酶消化的程度是一个关键:消化过度则对细胞的活性损伤较大,并有部分细胞漂浮,随弃去的胰酶流失;消化不足则细胞难于从瓶壁上吹下,反复吹打同样也会损伤细胞活性。 影响消化速度的因素较多,主要有胰酶溶液的活性(配制条件、冻存或4℃保存时间长短、是否反复冻融、化冻后存放时间及温度等)、消化时的温度(气温、细胞培养瓶及胰酶溶液的温度)以及所加胰酶溶液的多少等 。以笔者的经验,以轻吹或加培养液后轻摇可下较好,但对于经验不太充分的实验者而言是较难判断掌握的。 下面将细胞生长及不同消化程度的光学显微镜照片列出以供参考。(所用细胞为CHO贴壁细胞,培养基为含10%小牛血清的DMEM-F12,倒置显微镜10X40, 数码相机300万像素。)
取细胞冻存管一支,于40°C水中速融;25ml细胞方瓶中加入含10%COSMIC小牛血清的DMEM-F12培养基10ml,将冻存管中细胞全部洗入瓶中,置37°C 2.5%二氧化碳孵箱中静置培养。4小时后倒去全部培养基以去除冻存液,更换10ml培养基,同上静置培养。(见图1)
经24小时培养后,生长情况为:(图2)
经48小时培养后,细胞已长成致密单层:(图3)
加入2.5%胰酶后,细胞逐渐皱缩变圆,细胞间隙增大不再致密:
刚加入胰酶,细胞仍呈致密单层:(图4)
细胞开始皱缩但不明显,仍维持细胞正常形态:(图5)
细胞明显皱缩变小,细胞间隙增大不再致密,部分细胞维持正常形态,部分细胞皱缩变圆:(图6)
细胞基本皱缩变圆,此时细胞吹打可下:(图7)
细胞完全皱缩变圆,此时应弃去胰酶,加入培养基后轻摇可将细胞从细胞瓶壁上洗下,将细胞悬液用吸管吹散后传代:有经验后,可肉眼对光观察贴壁半透明的细胞层,判断消化程度。(图8)


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作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:02

图2 接上文的图片

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作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:03


图3 接上文的图片


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作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:03


图4 接上文的图片


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作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:03


图5 接上文的图片


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作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:04


图6 接上文的图片


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作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:04


图7 接上文的图片


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作者: summerxx    时间: 2012-4-16 13:04


图8 接上文的图片


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作者: yes4    时间: 2012-4-16 13:05


本人的感触"世上没有比细胞更难养的了,动不动就死给你看".我养细胞已经有一年了吧,刚开始跟同学学习还可以,但是后来我们自己完全独立操作了,事就出来了。过滤的培养基不能用,老是污染。没办法找原因,还是主任经验丰富,是滤纸惹的祸。之前的滤纸是很早以前的,很好用的。后来用完了,又换了一批。那时我很郁闷连这点小事都做不好那算什么呀。慢慢的好起来了,做了几次原代,还好没有污染。细胞长的也可以。可是后来又有一次原代培养,结果很蹊跷,细胞都死了,我们找不到原因。后来老师终于找到了,那就是我们的培养基的PH值出了问题,太碱了,所以细胞都死了。细胞培养确实想养自己的孩子一样,细心地对待它,就会好起来的。记得不能偷懒。有一次,周六周日我和我同门都不想去实验室了,周一过来一看细胞都飘了,好惨呀。还得从头再来。

作者: woshituzhu    时间: 2012-4-16 13:05


养细胞已经7年了,养过很多细胞,包括原代培养等,最多时一个人养了8株细胞,只见我从早到晚“霸占”着超净台,培养瓶等等,惹得实验室的兄弟姐妹们个个怨声载道。幸好技术员老师支持我,说实验室养细胞唯一放心的就是我。主要是我替她做了不少工作,保了许多实验室以前没有的细胞株的种,而且复苏后仍然长势良好,给后面的师弟师妹们省了许多心。其实养细胞就是要细心,多想为什么,细节决定成败!不同细胞生长条件千差万别,要多看文献,多摸索。有时看着下面的师弟师妹们,我都吓死了,弱弱地替他们担心。上面有站友说启蒙老师很重要,我同意,开始养成的坏习惯,很难再改正。我很感谢我启蒙老师!

作者: is2011    时间: 2012-4-16 13:06

培养细胞有5-6年了,也来谈谈我的体会:
1,对待细胞要象对待自己的孩子一样,要用心呵护,不能让它渴着,饿着,及时喂食给它,并创造良好的环境,让它茁壮成长
2,细胞是有感情的,你对它好,它也对你好,很给你争气的,你想它怎样,它就会顺着你的意思,否则,就象淘气的孩子一样,不听你的话
3,细胞也有心情低落的时候,所以尽量赶在它心情好的时候让它做事,这样才能事半功倍,我可以举个例子,我最初养U937细胞时,想让它分化,用尽了各种办法,加LPS+PMA,不同浓度和时间,可是细胞就是没反应,我就把这个实验搁置了一段时间,有养活它一段时间后,和它混熟了以后,重复以前的实验,结果只用PMA分化效果就非常好,以后的实验就自然很顺利,上图片:1#[img][/img]
4,每种细胞都有自己的个性,要按他们各自的特点来培养,
如我养的平滑肌细胞很活跃,喜欢热闹,2-3天就好多人口,而且不太爱吃喝,真是最好养的孩子了2#[img][/img]
内皮细胞和平滑肌细胞性格相近,不过它很不讲卫生,也很邋遢,里面有很多分泌屋,要经常换洗才行3#[img][/img]
RAW264.7细胞也很开朗,而且很能吃,要经常喂它,头疼的是细胞很容易活化,培养它的瓶子和环境没有内毒素才好,不过我这个当妈的很难满足它了4#[img][/img]
脂肪细胞3T3-L1正如它的名字,很慵懒,不活跃,他们倒是很团结,经常手拉手不分离,不需要我太多照顾5#[img][/img]
成骨细胞MC3T3也是很安静的,爱和我玩隐身,想看清它的动向有点难,不过不需要我经常照顾它,自己就长的很好,算是比较省心的6#[img][/img]
肝细胞L02让我很担心,好像生病了,不晓得染了病毒很是什么,长倒是长,就是觉得不健康7#[img][/img]
还有很多癌细胞,就不祥述了,他们都是很听话的,只要对他们好点他们也不会调皮的
图片如下:


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作者: 3648755    时间: 2012-4-16 13:08

我是个新手,也就养了半年细胞,我的感觉是养细胞一定要足够细心。忘记提前准备好所有的东西,我曾经犯过的错误,结果是我的细胞半死不活,平时四天就能长满的细胞养了十几天还没满,搞得我情绪非常不好,导师也对我没好脸。当然无菌操作是必然的,体外生长的细胞对微生物及一些有害有毒物质没有抵抗能力,因此培养基应达到无化学物质污染、无微生物污染(如细菌、真菌、支原体、病毒等)、无其他对细胞产生损伤作用的生物活性物质污染(如抗体、补体)。对于天然培养基,污染主要来源于取材过程及生物材料本身,应当严格选材,严格操作。对于合成培养基,污染主要来源于配制过程,配制所用的水,器皿应十分洁净,配制后应严格过滤除菌。
作者: tianmei001    时间: 2012-4-16 13:08

我6月份开始正式养细胞,所说不到一个月,那个心酸和痛苦已经体会到了。刚开始买细胞株回来,养的特别好,也没人带我,都是一个人看资料来养的。本来状态超好,传了三代,有七八瓶细胞,因为没冻存管没冻存,等我那瓶旧培养基用完了换了一瓶新配的培养基细胞两天全死了,欲哭无泪!所以一定要冻存。
另外一点就是一定要细心,记得我第二次传代的时候,加入胰酶7、8分钟怎末都没动静,后来一看我把谷胺酰胺当胰酶了,两个的瓶子一样的,凭感觉就拿过来了用了。幸好不是对细胞有毒的。还有一次换液,一不小心吸头落到培养瓶里了,就用镊子取出来,增加了污染的几率。

作者: zhenxin    时间: 2012-4-16 13:09


我和老公都养细胞有将近6年了,算是熟手了,但是有时还是会不时出点问题,细胞就象孩子一样需要悉心的照料,老公以前养肝细胞,现在养干细胞,我呢,以前养了不同种类的血管内皮细胞,现在样平滑肌细胞希望大家多多交流哈

作者: one    时间: 2012-4-16 13:09


我养了10年的细胞,从原代细胞到VERO细胞至现在培养MRC-5,2BS,HPF等二倍体细胞,真像以上各位所谈到的那样坚辛,真像侍候小孩子一样,也有过污染,但都是由于使用液体包装过大,一次用不完多次使用造成的,现在细胞培养状况很好,但是自己仍然想再进行培养基的优化,不同细胞株使用的培养基及血清是不同的

作者: ritou1985    时间: 2012-4-16 13:10


感谢这么多热心人提供的图片
不过大家可不可以对于细胞型号备注清楚一点啊?

作者: 911    时间: 2012-4-16 13:11

今天细胞心得:养细胞是一门艺术!
作者: woshituzhu    时间: 2012-4-16 13:11

请问有谁分离过脐血单个核细胞吗?我分离过一次,可是镜下观有很多的红细胞,还有其它一些杂质细胞,哪位高手分离过纯的单个核细胞,请指点一下,谢谢了。我的具体步骤如下:采脐血50ml,冰盒内储存,一个小时后分离(因路途的原因),先用羟已基淀粉沉降一个小时(4度),取上血浆于另一离心管中,再用淋巴细胞分离液分离血浆,方法步骤同用淋巴细胞分离液分离外周血,离心后去上清,用PBS洗涤两次,用含10%胎牛血清重悬培养,镜下观见很多的红细胞以及一些杂质细胞,请问用什么方法可以去除这些红细胞啊,我用淋巴细胞分离液分离外周血单个核 时非常好,可是分离脐血效果就很糟糕了。急,请各位多多指教

另外,分离脐血后我用药物干预两天,请问这两天用什么培养好啊,只用含10%胎牛血清的1640可以吗?

作者: 49888    时间: 2012-4-16 13:11

本科毕业时就养细胞,但是当时整个实验室的细胞状态都不好,大家换衣是污染了一种黑色小胶虫的微生物,为了能顺利完成毕业答辩,只好改做ELISA。于是,从那时开始,细胞培养在自己的心里也就留下了阴影。研究生进实验室之后,分子生物学实验做完后,又开始跟细胞打起了交道,回顾一下细胞培养的历程,有如下收获:
1、细胞就像孩子,一定要像关爱孩子一样关爱细胞。一定要勤快,最好隔一天给细胞换一次培养基,且培养细胞时加的培养基一定要充裕,否则容易饿着它,它就会给你脸色看。冻存细胞的前一天要给细胞换液,这样有利于细胞保持良好的状态。
2、细胞污染的处置:污染了真菌后,如果肉眼见到霉团了,那就扔之吧;如果是只是在显微镜下见到少量的真菌,可以倒掉液体后,加入新的培养基,同时加入一定量的氟康唑,即可拯救细胞。当细胞培养板中发现霉菌污染时,而细胞又非常重要(如制备分泌单抗的细胞株时),这时可以关闭无菌操作台的风机,在有霉团的细胞孔中加入碘酊,作用5-10分钟后,吸出碘酊,这样可以避免其他没被霉菌污染的细胞孔中的细胞。
3、不同的细胞株,即使使用的是同一种培养基,也不要使用同一瓶培养基,还有,操作完一种细胞株后,不要没有经过紫外线照射就操作另外一种细胞株,以防细胞株间的交叉。

作者: wu11998866    时间: 2012-4-16 13:12

说一点,所用的血清,培养基及双抗等在用之前可以先分装,这样是避免污染的一个很好的方法
作者: bongte    时间: 2012-4-16 13:12


我也来说几句,养细胞时间不算太长,算来前前后后也有10来中细胞株,自己分离的原代细胞也有三四种了。癌细胞就不说了,长的都快也好养,有时候感觉随便养养就行,不过随便养养也不是随便说的,每次还是要按步就班的来,要不然里面长出其它活物来可就麻烦了。加点双抗是有必要的至少心里放心一些。增湿盘里可以放点硫酸铜对霉菌有些作用,定期清理很重要,再好的培养箱时间长了不清理也会出问题。孩子对了总有些偏爱,我最喜欢原代的心肌细胞了,在显微镜下动啊动的可有意思了。
个人几点经验:
1.自己的细胞自己养,让别人帮着换个液什么的总会不太放心,前期准备最好也有一个人来完成,自己准备的东西用着放心。
2.准备很关键,没有好的准备工作啥也别说,PH值、盐离子、灰尘、微生物都在等着你呢。
3.要多观察,多思考,有时候全信本本上的也是不行了,多思考,比如细胞诱导,文献上说诱导48小时,但是你的就不一定行,可能48小时全漂漂了,这个48其中换相同液一次文献上还没说呢呵呵。
4.绝对不能偷懒,该换液的时候换液该传代的时候传代。
5.分离细胞的时候千万注意文献上的RPM,呵呵不知道机器型号的RPM基本等于没说,知道型号不同转头也不行,水平离心跟45度角离心差别也大得很,不信你试试。
6。正常生长的细胞,拧紧瓶盖置室温一周细胞不会死数量也基本不会增加,所以你从别处快递来的细胞长途跋涉不是很脆弱的细胞都没问题,呵呵,偶然发现,不适用于所有细胞,当然大冬天的放室温肯定是不行了。

作者: wmp1234    时间: 2012-4-16 13:13


关于原代细胞培养的话,大家切记不满让它长的太满,在细胞大面积接触之前传代,大部分细胞在70%左右吧,宁可分早了少分几瓶也不要让他长过了。
原因:
1、原代细胞接触之后,会抑制生长(大多数细胞系也是如此啦)。这个抑制信号会导致你的细胞老化或分化。总之就使得你的细胞状态不行了。许多原代细胞养的注意的话养个20-30代的话细胞的原有特性还是能维持的。
2、原代细胞大多数时候很难保证100%纯的细胞,常见的杂质细胞是成纤维细胞。这个细胞要命的是他接触了还会继续生长。所以如果长的过满了,成纤维细胞会继续生长,导致在你细胞中的比例就迅速增加了。比如本来之后0.5%,长的过满之后下一代细胞中比例可能就是5%了。
以上经验是我一个在某原代细胞公司的朋友(可以说是世界上原代细胞种类最多的一个公司)传授的,希望对大家有帮助。

作者: shenkunjie    时间: 2012-4-16 13:13

新手,刚做了2批新生乳鼠心肌细胞培养,那个惨啊。第一次20个皿污染了16个,现在第2次很多黑疙瘩与细胞们紧密接触,难舍难分,不知道咋办好。。。。。
作者: remenb    时间: 2012-4-16 13:14


没养过孩子养过细胞,养细胞个人认为最需要的是耐心和细心,三天打鱼两天晒网是肯定不行的。
1、耐心。每天都要照看,了解它们。
2、细心。要细心的照顾它们。
细胞其实是和我们一样的有脾气的,如果养的好的话她和你是一起的,你好他就好,如果你心情不好他也就会随之不开心,曾经听人说过一句话,“要不然怎么说是我养的呢”。
细胞需要的是坚持,你要一直和他在一起,他才会好,你要是离他而去,他也就会和你自然分手再也不会理你了。你要为离开他付出双倍甚至更多的代价!所以千万不要离开你自己的细胞!

作者: qhyu    时间: 2012-4-16 13:14


DMEM细胞培养基的高糖和低糖对细胞培养影响并不大,我几年前刚开始做细胞培养时也常为此困扰。如果为了保险起见,选高糖的好了。培养基中的谷氨酰胺、丙酮酸钠浓度更重要,一定注意不同货号培养基之间的细小差别,最好选组分全加 入的货号产品,毕竟省得不少另加试剂的开销。HEPES的添加也很关键,尤其对代 谢旺盛的细胞更是如此。选血清时,宁可买Hyclone公司的新生牛血清,也不要用国产胎牛血清,切记。经济情况允许,建议用Hyclone的Define级血清,效果太好了。实际上国产胎牛血清都是新生牛,基本上都是病弱新生牛未哺乳前取的血,甚至不如进口新生牛血清,价格却相差不多。国产血清有的时候太“脏”了,其中的内毒素、支原体等指标都达不到要求,最近研究表明,内毒素是细胞凋亡的诱因之一。如果不做细胞因子和免疫相关的实验,建议血清不要灭活,灭活后严重影响细胞生长速 度,且细胞贴壁率降低。
Gibico的血清很好,我读硕士时一直用。但是最近两年由于疯牛病的原因(Gibico的血清不都产在美国和澳洲,也有疯牛病发生的国家),进口的少,价格也贵。同一价格的前提下,毕竟Hyclone的Define级质量更好。Sigma的血清也很好, 质量标准比Hyclone的还严格。具体选那种,还得根据您的工作性质而定,毕竟在国内科研经费有限,除非老板有上千万的项目,可以不计实验成本。
关于血清浓度和是否灭活,取决于您的具体实验,并没有严格的规定。一般原代细 胞培养血清浓度稍高,我用20%,有利于提高细胞贴壁成活率,尤其是消化分离后 没有培养而直接冻存的细胞复苏,就应该加25%血清。如果做MTT实验或类似的四唑盐参与线粒体代谢的实验,血清浓度尽可能低一些,一般5%-10%,可以减少血清对结果的干扰,尤其是采用水溶液法(如加10%SDS盐酸 溶解而不用DMSO)时更加重要。如果您做流式细胞分析,需要分析细胞周期,要经过一个“同步化”过程,有的学者用血清饥饿法,也就是24小时不加血清,使细胞周期趋于同步化。
我的细胞传代原则:不用EDTA,只用胰酶,先用D-hank's洗掉残留培养基和血清,然后按1ml胰酶/10cm2培养面积加入,镜下观察,待到细胞回缩明显且尚未脱壁时(这个过程不超过1分钟),倒掉大部分胰酶,只保留细胞表面被少量胰酶湿润,37度培养箱中放置5-15分钟,直至细胞可象流沙状下滑,加入含血清培养基终止消化,轻轻吹打使细胞散开,如有团块,可考虑200目筛过滤,可不洗涤离心细胞。此种方法对细胞伤害最小,如果做流式细胞分析,也可用此法,只不过在胰酶中加 入等量EDTA溶液,出来的峰极规整漂亮。某些细胞只用常规培养基不行,还必须补充生长因子或特殊量的氨基酸才能正常生长,要多参考相关文献。

另外,二氧化碳张力和温度也很重要,有些细胞需要较高的二氧化碳浓度或较特殊
的温度。可选用透气盖培养瓶或培养皿培养板培养。

作者: dongdongqiang    时间: 2012-4-16 13:14


有意义,今天刚得到人生第一株细胞,我这个比较简单,师兄把什么都准备了,只要换液,每天照看一下就行。师兄还是挺把我当回事的,什么注意事项都交代了,还有一些现在用不到但是养细胞必须的事项都说了。
只是第一天就不太如意,NF-KB本来就娇弱。昨天看的时候细胞还挺好的,那时就应该换个皿分两份了,今天一看,细胞长多了,成片飘了起来。吸掉上面的细胞后只剩一点点细胞,不知道移到新的皿里还能长好不。心里很忐忑啊。

作者: any333    时间: 2012-4-16 13:15

我的细胞传代原则:不用EDTA,只用胰酶,先用D-hank's洗掉残留培养基和血清,然后按1ml胰酶/10cm2培养面积加入,镜下观察,待到细胞回缩明显且尚未脱壁时(这个过程不超过1分钟),倒掉大部分胰酶,只保留细胞表面被少量胰酶湿润,37度培养箱中放置5-15分钟,直至细胞可象流沙状下滑,加入含血清培养基终止消化,轻轻吹打使细胞散开,如有团块,可考虑200目筛过滤,可不洗涤离心细胞。此种方法对细胞伤害最小,如果做流式细胞分析,也可用此法,只不过在胰酶中加 入等量EDTA溶液,出来的峰极规整漂亮。某些细胞只用常规培养基不行,还必须补充生长因子或特殊量的氨基酸才能正常生长,要多参考相关文献。

——————————————————————————————————————————

前天试用此法,非常好,以前我在室温消化30min都下不来的,在培养箱里5分钟就搞定了。
非常好。

作者: join    时间: 2012-4-16 13:15


刚开始跟师姐养细胞,来逛逛,才发现养细胞这么难了。
好好学习了一下,谢谢楼上所有的师傅们的宝贵经验和建议!

作者: 969    时间: 2012-4-16 13:16

不可否认以上的都是养细胞经验丰富的高手,
遇到高手我可要请教一个问题,不知道可否解答给小弟
我养的巨噬细胞,昨天传的代,出现紧缩成圆形聚集的现象,不知道是什么原因,有什么解决办法,我现在换液换成20%FCS,不知道怎么样,很焦急,希望得到帮助

作者: bohe221    时间: 2012-4-16 13:16


前脂肪细胞实验交流QQ群(95152108)。从事前脂肪细胞研究的同行朋友,多多交流学习。互相帮助,共同进步





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