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标题: 【求助】免疫沉淀沉淀不完全 [打印本页]

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 15:47     标题: 【求助】免疫沉淀沉淀不完全


我做免疫共沉淀,沉淀HSP90发现沉淀很不完全。蛋白大部分还留在上清中,沉淀中的很少。我用的是RIPA裂解液,250ug总蛋白用了2ug抗体,加入抗体后在4度缓慢摇晃24h,后又加入珠子4度缓慢摇晃过夜。请问各位大侠问题在哪里?谢过了先!

作者: popo520    时间: 2013-7-3 15:47


这个抗体可以进行IP?

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 15:47



QUOTE:
原帖由 popo520 于 2013-7-3 15:47 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

这个抗体可以进行IP?

可以的,说明书上说可以进行IP
作者: popo520    时间: 2013-7-3 15:48

沉淀后的检测实验是怎么设计的?
作者: 04906    时间: 2013-7-3 15:48

沉淀后的上清取出,跑电泳,珠子用RIPA裂解液洗两次后加入适量裂解液及Loadingbuffer,95度煮5min,然后跑电泳,转膜后用HSP90的一抗杂,上清中的蛋白量远比沉淀中的多。不知这样有错没
作者: one    时间: 2013-7-3 15:48


What isotype of your antibody? Did you check the beads fit the antibody isotype or not?

作者: NBA    时间: 2013-7-3 15:49


珠子用哪里的?

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 15:49



QUOTE:
原帖由 NBA 于 2013-7-3 15:49 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

珠子用哪里的?

isotype是rat IgG2a,珠子与它的isotype 是适合的。愁死了,会是什么问题呢?
作者: bling    时间: 2013-7-3 15:50

Modify the cell lyses buffer as following :

50mM Tris HCl pH 7.5

150 mM NaCl

1% Triton X-100

add proteinase inhibitors freshly

作者: vera+    时间: 2013-7-3 15:51


大多数情况是抗体或者珠子原因
自身的话 1 lysis是否可以用NP-40
一抗过夜孵育 珠子3h以上

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 15:51


珠子是santa的,protein A/G plus-agarose immunoprecipitation reagent (sc2003)。裂解液用的RIPA,配方是50mMTris(pH7.4),150mMNaCl,1%NP40,0.1%SDS,说明书上说特别适用于免疫共沉淀。麻烦大家帮我看看有没有不妥的地方?

作者: BOSS2011    时间: 2013-7-3 15:51


SDS may influence protein bind onto antibody in some cases, it is why I suggest you delet SDS in cell lyses buffer.

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 15:51


谢谢!我明白了,下次用不含SDS的裂解液试试。是不是只要不含SDS就行啊?Triton和NP40都行吗?

作者: BOSS2011    时间: 2013-7-3 15:52

Yes. The CHAPS is better but it is very expensive.
作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 15:52


我还想再问下:IP后洗涤是否也用同样的裂解液?为了不破坏蛋白之间的相互作用,洗涤步骤是否有需要注意的地方?谢谢

作者: BOSS2011    时间: 2013-7-3 15:58


A.IP后洗涤是否也用同样的裂解液?
Yes.

B. 为了不破坏蛋白之间的相互作用,洗涤步骤是否有需要注意的地方?
1. Washing beads gently.
2. Add glycerol to final 5% if necessary, it can make protein stable in some cases.
3. Add phosphase inhibitors if the PPI may relate to the statuse of protein phosphrylation.

Good luck!

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 15:58

BOSS兄,另外清洗珠子时用的离心条件是怎样的呢?2000r,3min行吗?
作者: BOSS2011    时间: 2013-7-3 15:59


Yes. 2000rpm x 3min or 3000rpm x 2 min are OK.

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 15:59


我最近用非变性裂解液又做了一次,HSP90大部分都沉淀下来了,但是杂AKT,看到的结合量还是很少,请大家帮我想想还有什么地方有可能破坏了蛋白之间的相互结合?比如清洗珠子的时候能不能不用裂解液,用PBS可以吗?我觉得这样比较温和。谢谢了!

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 16:00


另外,我还想问一下:coIP阴性对照是怎么设的?我们实验室没有正常的IgG,应该用什么设阴性对照呢?是不是应该设一个只加珠子不加抗体的对照啊?来证明珠子不会将蛋白沉下来。

作者: BOSS2011    时间: 2013-7-3 16:00


我最近用非变性裂解液又做了一次,HSP90大部分都沉淀下来了,但是杂AKT,看到的结合量还是很少,请大家帮我想想还有什么地方有可能破坏了蛋白之间的相互结合?比如清洗珠子的时候能不能不用裂解液,用PBS可以吗?我觉得这样比较温和。谢谢了!

1. You can decrease the concentration of salts and detergent, e.g. 50mM Tris HCl pH 7.5, 150 mM NaCl, 0. 1% Triton X-100/NP-40, and using 1/3-1/5 of proteinase/phosphase inhibitors after first washing because most non-binding proteins are washing away.

2. You can use linker reagent to treat sample if you are so worry about decrease of PPI.



另外,我还想问一下:coIP阴性对照是怎么设的?我们实验室没有正常的IgG,应该用什么设阴性对照呢?是不是应该设一个只加珠子不加抗体的对照啊?来证明珠子不会将蛋白沉下来。

Typical controls for co-IP are

1. Normal Ab isotype as Ab used in IP.

2. Use same cell/tissue from knock out animal.

3. 只加珠子不加抗体 only for pre-cleaning cell/tissue lysates, it can not be used as control.

4. 我们实验室没有正常的IgG: You can ask your supervisor to buy it, it is cheap.

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 16:00

谢谢!我还想问下linker reagent是什么啊?
作者: BOSS2011    时间: 2013-7-3 16:01

DSP IS COMMON ONE. Search on net and read the introduction of this reagent.
作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 16:01


这次用PBS洗的珠子,不含去垢剂,操作很轻柔,但是改观不大,哭!请问还有哪些地方没注意到的呢?

作者: BOSS2011    时间: 2013-7-3 16:01


1. Why use PBS 洗珠子?

2. You did not write down your experiment step by step, who knows 还有哪些地方没注意到的呢?

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 16:02

具体操作步骤如下:1 蛋白用非变性裂解液(不含SDS)裂解,定量,加入HSP90一抗(rat),1mg蛋白对1ug的抗体量,4度摇床摇晃24h;
2 加入珠子,500ug蛋白对应20ul 50%的珠子,4度摇床摇晃过夜;
3 反应结束后4度2500r,3min离心,取出上清,珠子用PBS轻柔地清洗两边(用PBS是因为它只含盐,不含去垢剂,为了不破坏蛋白之间的相互作用),每次洗完4度2500r,3min离心,弃上清。
4 清洗后的珠子加入Loading buffer 100度煮10min,电泳,western.
结果HSP9080%都能沉淀下来,但是和它结合的蛋白如AKT等非常少。郁闷。
请大家帮我看看哪里有错?

作者: BOSS2011    时间: 2013-7-3 16:02

具体操作步骤如下:1 蛋白用非变性裂解液(不含SDS)裂解,定量,加入HSP90一抗(rat),1mg蛋白对1ug的抗体量,4度摇床摇晃24h;
2 ug 抗体 would be better

2 加入珠子,500ug蛋白对应20ul 50%的珠子,4度摇床摇晃过夜;
25-40 ul 50%的珠子would be better. o/n is OK.

3 反应结束后4度2500r,3min离心,取出上清,珠子用PBS轻柔地清洗两边(用PBS是因为它只含盐,不含去垢剂,为了不破坏蛋白之间的相互作用),每次洗完4度2500r,3min离心,弃上清。
用PBS轻柔地清洗: when you write paper for publication, are you sure your reason can be accepted by reviewer?

4 清洗后的珠子加入Loading buffer 100度煮10min,电泳,western.

结果HSP9080%都能沉淀下来,但是和它结合的蛋白如AKT等非常少。郁闷。
Read this paper carefully
Proc Natl Acad Sci U S A. 2000 September 26; 97(20): 10832–10837

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 16:03


我用PBS清洗珠子也是根据珠子的说明书做的,santa的珠子说明书是说用RIPA裂解液或PBS清洗均可。不知有什么问题?另外那篇文献我研读了以后再跟你讨论哈。

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 16:15


我这次做CoIP打算用以下缓冲液清洗珠子:50mMTris,150mMNaCl,pH7.5,按1:100加入蛋白酶和磷酸酶抑制剂,请大家帮我看看行不行?希望这次就能做出来,谢过先。

作者: 莓菓333    时间: 2013-7-3 16:16


另外我还想问一下,每次清洗珠子用多少体积的清洗液合适啊?少了怕洗不干净,多了又怕破坏二者之间的相互作用。

作者: yychen    时间: 2013-7-3 16:16

我做免疫共沉淀,沉淀HSP90发现沉淀很不完全。蛋白大部分还留在上清中,沉淀中的很少。我用的是RIPA裂解液,250ug总蛋白用了2ug抗体,加入抗体后在4度缓慢摇晃24h,后又加入珠子4度缓慢摇晃过夜。请问各位大侠问题在哪里?谢过了先!

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你好,我最近也要做免疫沉淀,请问铺板的时候贴壁细胞要铺多少密度的啊?实验过程中的蛋白用的比较多,我今天测了蛋白浓度都不够用。。。
还有用的一抗是不是与做western 的一抗不同啊?我做western 的一抗说明书上面应用范围里面没有提到可以用于做免疫沉淀。是不是得重新买可以做免疫沉淀的抗体啊?

作者: yychen    时间: 2013-7-3 16:17

谢谢!我明白了,下次用不含SDS的裂解液试试。是不是只要不含SDS就行啊?Triton和NP40都行吗?

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不可以用SDS裂解液的啊
作者: yychen    时间: 2013-7-3 16:17

我做免疫共沉淀,沉淀HSP90发现沉淀很不完全。蛋白大部分还留在上清中,沉淀中的很少。我用的是RIPA裂解液,250ug总蛋白用了2ug抗体,加入抗体后在4度缓慢摇晃24h,后又加入珠子4度缓慢摇晃过夜。请问各位大侠问题在哪里?谢过了先!

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一抗有多克隆和单克隆,有啥区别啊?




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