标题:
【求助】蛋白纯化后无吸收峰
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作者:
gemei0115
时间:
2013-12-27 10:47
标题:
【求助】蛋白纯化后无吸收峰
我用了400ml的菌液,超声后,取1ml上清上样,但是洗脱之后,测OD280没有吸收峰,希望哪位大侠给点指引,谢谢!
作者:
fsdd817
时间:
2013-12-27 10:48
是不是没有挂上柱啊,我是加完样品后,让样品留到柱子中后,将下端封闭,静止一个小时。
作者:
gogo
时间:
2013-12-27 10:48
相关疾病:
电击伤
条件不明,无法分析。请点击看我的签名档“如何提蛋白质纯化问题”。
作者:
gemei0115
时间:
2013-12-27 10:48
谢谢!
我的上样量少吗?为什么每次测OD280值都在0.1左右?
书上说PMSF半衰期80min,是不是要多加几次啊?
我是新新手,谢谢!
作者:
gogo
时间:
2013-12-27 10:49
你很多问题没有说明,如:
胶的种类、柱大小、破菌缓冲液体积、破菌后的处理、柱平衡缓冲、洗脱缓冲、如何收集、纯化仪器等等。
无法分析啊。
作者:
gemei0115
时间:
2013-12-27 10:50
400ML菌液,OD600=0.5-0.6,加IPTG(终浓度0.5mM),22℃诱导12h,超声收集上清,取1ml非变性条件下纯化.
破菌缓冲液:50mM NaH2PO4,300mM NaCl,pH8.0,PMSF6微升
破菌方法:超声400W,4s工作,6s间隙,冰水浴,共300次
洗涤液:PBS
柱平衡液:pH8.0,50mM NaH2PO4,300mM NaCl,pH8.0
柱淋洗液:50mM NaH2PO4,300mM NaCl,20mM 咪唑,pH8.0,50mM 咪唑
100mM 咪唑250mM 咪唑500mM 咪唑,每个浓度10ml阶段洗脱
载体类型:BL21PlysS,6-His
敬请各位大师指点,再次感谢
作者:
gemei0115
时间:
2013-12-27 10:50
镍离子亲和层析柱,柱子是1ML预装重力柱,破菌缓冲液是按10ml/g加的
破菌后12000rmp,30min收集上清上柱
谢谢热心的老师
作者:
gogo
时间:
2013-12-27 10:50
从程序上没有看出有什么问题。上样量确实是偏小了。
一般表达量很好的E.coli.蛋白,Ni柱纯化1g湿菌大约可以达到5-15mg的蛋白。按你的上样量计算,你这个1ml柱最多大约上样了0.5mg-1.5mg的可结合蛋白,如果表达量一般的话,量就更少,可能只有0.1-0.5mg蛋白。几个10ml咪唑浓度的分段洗脱后,洗脱液中的目标蛋白浓度确实很低。OD值低也就可以理解了。
建议:
1、加大上样量10倍。
2、先不做分段洗脱,上样淋洗(用20mM咪唑条件)后,直接用250mM咪唑洗脱,看看峰和电泳的情况,确定能够吸附。
3、多发酵表达一些菌,再做下一步纯化。
作者:
wood533
时间:
2013-12-27 10:51
我觉得试验的每个步骤都需要对照。先将你的上清跑个胶看看有没有你的蛋白,一个一个步骤的找原因~
作者:
ukonptp
时间:
2013-12-27 10:51
pmsf特点
1) 抑制丝氨酸蛋白酶(如胰蛋白酶,胰凝乳蛋白酶,凝血酶)和巯基蛋白酶(如木瓜蛋白酶);
2) 10mg/ml溶于异丙醇(或无水乙醇)中;它对异丙醇没有特殊要求,分析纯即可,它也可以用DMSO进行配置,储存浓度同样为100mM
3) 在室温可保存一年,一般保存在-20度或4度.;
4) 工作浓度:17~174ug/ml(0.1~1mM),储存液浓度为100或200mM;
5) 在水液体溶液中不稳定,30分钟就会降解一半,必须在每一分离和纯化步骤中加入新鲜的PMSF,样品处理超过1h,补加一次。(见水分解,使用前加入)
作者:
ukonptp
时间:
2013-12-27 10:52
思路应当是 先确定存在,然后寻求位置,最后从该位置/梯度中得到目的产物
期待你的结果!
作者:
gemei0115
时间:
2013-12-27 10:52
电泳证实有目的蛋白。是不是我的目的蛋白上清表达太少啊?我的目的蛋白形成包涵体比较多,但我看好多战友说蛋白复性很困难,于是我就降低温度表达,但今天纯化了一次也没有吸收峰,请各位大侠多多指教
作者:
gogo
时间:
2013-12-27 10:53
QUOTE:
原帖由
gemei0115
于 2013-12-27 10:52 发表
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电泳证实有目的蛋白。是不是我的目的蛋白上清表达太少啊?我的目的蛋白形成包涵体比较多,但我看好多战友说蛋白复性很困难,于是我就降低温度表达,但今天纯化了一次也没有吸收峰,请各位大侠多多指教 ...
没有吸收峰是不合情理的。高浓度的咪唑在OD280A处也有一个峰的。
即使你的蛋白完全没有吸附,换用100mM 咪唑250mM 咪唑500mM 咪唑时,都有一个个台阶峰出现。
检查系统连接、检测器是否正常。
我的经验,如果你的蛋白有可溶性表达存在,那么包涵体复性(仅仅指去除变性剂)也不会很困难。当然能用上清纯化到目的蛋白最好,但是绝对不要怕做包涵体。
作者:
gemei0115
时间:
2013-12-27 10:53
谢谢各位老师的指点!
我放弃上清纯化,采用纯化包涵体的办法,结果纯化的条带非常好,下一步继续做复性,还请各位老师给点意见,谢谢
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