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标题: 【求助】超声波破碎细菌+Triton-X-100 [打印本页]

作者: chengjie79    时间: 2013-12-28 14:57     标题: 【求助】超声波破碎细菌+Triton-X-100


原核表达后超声波破碎细菌提取重组蛋白,网上很多帖子都说用含有1%的
triton-X-100的PBS悬浮,然后超声的效果较好,可是我在超声时加入triton后不一会就出现大量泡沫,最终导致破碎不完全,超声仪器感觉也很费劲,声音都几乎听不见了,是我哪里做得不对,但是重复了两次都是感觉加triton有问题。不解,请各位指点。

作者: chengjie79    时间: 2013-12-28 14:58


有人说是探头位置的问题,但是我感觉不是,只要不加triton泡沫就会好很多。

作者: am10    时间: 2013-12-28 14:58

triton是一种表面活性剂,或多或少会对产生泡沫有一定的贡献。
你只是做原核表达,E. coli超声破碎很容易的啊,没有必要加triton的。

作者: duoduo    时间: 2013-12-28 14:59


如果不是蛋白实在溶解不好,没必要加.

作者: am10    时间: 2013-12-28 14:59


我又想起一点,你加表面活性剂,是不是你表达的是膜蛋白??

作者: chengjie79    时间: 2013-12-28 14:59


我表达的不是膜蛋白,但是重组蛋白可溶部分很少,大部分是包涵体,ni-nta纯化后还要复性,我就怕复性不好后面没法做活性。试试吧!
尽管我不加triton,还是有些泡沫产生,是不是蛋白变性了啊! 我用的500W,超三秒,停三秒,共破12分钟,也就是120个循环。

作者: remenb    时间: 2013-12-28 15:00


只要是有泡沫产生都意味着蛋白可能变性,建议你超3秒停6秒试一试,还有,破碎的时候盛放菌液的容器要放在冰水混合物中哦。

作者: BOSS2011    时间: 2013-12-28 15:00


我每次超声完离心后总是看见许多黑色的东西,有同学说是超的太厉害了,是不是这回事,我们那个老式超声波只能调节振幅、时间、超声间隔时间三个条件,我的条件振幅75、时间2分钟,间隔时间5s。这个时间我感觉就很短了,可每次还是有黑色沉淀。我的菌株是BL21,载体是PGEX-4YT-3,请问我怎么样才能摸索好超声条件?我用反复冻融法行不行?

作者: remenb    时间: 2013-12-28 15:01


天哪,怪不得。振幅降下来,调到30~35即可,黑色的东东是高温变性的蛋白啊。
你有没有一边冰浴一边超声啊?绝对不可以不冰浴的哦!

作者: ritou1985    时间: 2013-12-28 15:01

振幅降一些,如果你超声破碎后的包涵体要上柱纯化的话,你可以用裂解Buffer(如Buffer B)代替Trion X-100,一来裂解Buffer本身就具有破碎菌体的作用,二来它不会影响你的蛋白挂柱,我平时就是这么做的,效果还不错。还有一种配方是:溶菌酶+Trion X-100,有了溶菌酶,Trion X-100的量就可以减少些,泡沫就不会那么夸张了,效果也可以。具体的超声破碎条件就要视你的蛋白特性而定了,一般超声时间与间隔时间相当就可以了,再有你可以降低强度或超声时间,延长总的破碎时间,对你的蛋白损害小一点。再有就是战友们都提到的了:冰浴破碎,切记
作者: 阿司匹林    时间: 2013-12-28 15:03


既然你的蛋白是包涵体表达,那么建议你在超声的时候,不要加TritonX-100,出现泡沫液不是你所说的蛋白变性,包涵体蛋白是没有活性的,所以不存在变性与否的说法。在复性之前,随便怎么整都行,关键是复性条件与方法的选择。
TritonX-100是引起泡沫的主要原因,它不是消泡剂,虽然是表面活性剂.你可以选择在洗涤包涵体的时候加入Triton

作者: 阿司匹林    时间: 2013-12-28 15:04


请问我就是普通的破碎后提全蛋白 不是融合蛋白
有必要超声破碎么~?

作者: taoshengyijiu    时间: 2013-12-28 15:05


我也是遇到了上诉问题,我的也是包涵体表达,我看到的Triton X-100怎么说工作浓度是0.1%,我现在都搞不懂是0.1%还是1%?

作者: yonger    时间: 2013-12-28 15:05


最有可能的原因是超声溶液的体积太小,而超声探头太大,插入液面的深度不够。
与Triton的关系不大。破菌不用加Triton。

作者: tuuu2    时间: 2013-12-28 15:06


就气泡的问题:
超声破碎的体积一般在10-20ml之间,你可把探头距离50ml离心管底部0.3-0.8cm,可在此范围内来调节,看超声的声音是否刺,以及是否有气泡,如果有的话一般是往下调点,在这范围内一般不会有气泡的;
还有就是在菌体重悬后,用移液器尽量把你重悬的液体表面的气泡吸走,以防在破碎过程中使的蛋白变性,以及增加破碎过程中气泡的产生;
还有就是破碎一定要在冰浴中,保持低温;
TritonX-100:
这个浓度是个范围啊,一般有些蛋白本来不溶,用去污剂处理后就溶了,这个看去污剂的浓度;但这个我不知道发文章时候,是否承认是可溶性表达;呵呵,我们一般不加去污剂,而且去污剂在蛋白纯化及活性等后续实验中是很麻烦的事,因为,透析等方法是不可能彻底去除去污剂的;
祝好运!





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