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标题: 【分享帖】基因启动子区 甲基化引物设计心得 [打印本页]

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 09:23     标题: 【分享帖】基因启动子区 甲基化引物设计心得

SEARCH NCBI gene FOR 你的基因,找到你的基因,打开,可以看到 Genomic regions, transcripts, and products, 点击线条示意图上面的NC-XXXXXX.X,连接到你的基因序列,可以清楚的看到其每个外显子在基因组序列中的位置,第一个外显子的起点即转录起始点,围绕该点上下游500bp可以认为即所谓的核心启动子区,最小启动子区。扩大一点范围,可以远至转录起始点上游1000,乃至2000,都可归属于启动子区。其中有无启动子元件,可以用专门软件预测分析。
我一般就是在打开的基因序列页面上,通过修改上面的range: from XXXXX to XXXXXXX,来调出围绕基因转录起始点的序列,进行分析,设计合适的引物,进行MSP、BSP或克隆启动子。
当然,常见基因的启动子有的本身在数据库里就有记录,不用这么麻烦,直接调出就行了。但上述方法适应范围更广,别人没有研究过的,你也可以依据人类基因组计划成果进行研究。
该页面底部显示的序列不是该基因的转录序列。而是基因组序列,包括外显子和内含子的序列。改为Range: from 67326696 to 67329196 ,点后面的更新按纽,显示的就是我贴给你的序列。就是基因的启动子区。
对于该基因适用。对于其它基因,可能序列走向和HGP测序序列是互补的,这在注释条目里会有说明。此时,Range: from XXXXXXX to XXXXXXX,后边的数字会大于前边的。此时,应以后边的那个数字为中心修改,而不是前边的。否则你调出的是基因的尾巴,而不是基因的龙头,启动子区。

作者: bs4665    时间: 2015-7-2 09:23


不好意思,问一个弱智问题,什么软件可预测基因的启动子?本人一菜鸟,刚接触,希望多多了解!还有设计MSP,BSP引物也要根据启动子序列吗?谢谢!

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 09:24

启动子区的序列依据上述方法可以调出,但其中真正发挥作用的部分,即顺式作用元件,还要用专门的软件进行预测和实验验证。MSP,BSP都是研究甲基化的PCR衍生技术,启动子甲基化与基因表达密切相关,所以研究甲基化基因表达调控的一般选择启动子CpG序列进行研究。当然,如果是研究肿瘤诊断用甲基化标记的,不一定局限于启动子,关键是甲基化改变与肿瘤的相关性。
本人尚不会发图片,问题说的不清楚。请战友谅解。一定继续努力,好好学习,天天向上。

作者: veiwu    时间: 2015-7-2 09:27

aifuhong:我做IGF-1启动子区域的737/738位点的CA重复序列的PCR,但是我在基因库里怎么都找不到这个区域的核甘酸序列,你能帮我么?cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=67&id=10498928&sty=1')
作者: veiwu    时间: 2015-7-2 09:41

难道是硬在基因序列上找TATAAT这个特征序列么?然后按25个bp再推启动子区域么?
作者: dior    时间: 2015-7-2 09:42

请说明物种,人的还是其它的?文献报道的有引物序列吧. Blast或电子PCR一下,可以调出序列的. 据你提供资料,应为一个STR 微卫星位点.不知道你的研究目的是什么. 如要区分2bp的差异, 用普通PAGE有困难, 技术高点尚可以. 用ABI3130应该没有问题.但重复单位为2bp, 扩增时也容易出问题, 发生酶滑脱,形成非特异性的stutter带或峰,分析结果时应注意.
作者: veiwu    时间: 2015-7-2 09:42


谢谢!是做孕妇的,具体说是做脐血请原谅我知识匮乏,ABI3130具体是指什么样的方法?这个片段的等位基因型就是表达192个bp,如果我的目的只是弄清是此等位基因的纯合型、杂合型还是缺失型用什么分析产物的方法好呢?既简单又好的?

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 09:42


ABI公司的毛细管电泳系统。抱歉。还是看不明白你研究什么目的。纯合型、杂合型、缺失型的差别在什么地方?不同等位基因间是重复单位重复次数差异(长度差异),还是插入、缺失型的变异位点。是DNA水平研究变异或突变?还是研究基因表达,在mRNA水平?

作者: 阿k    时间: 2015-7-2 09:43


我也是刚刚接触甲基化,想问一下搂主有没有听说过这个软件ESME,好像可以做出附件中的图,这个图在很多国外的研究甲基化的文献中都有,如果用过请指点,还想问一下,您做甲基化是如何进行分析的,是克隆测序算出甲基化率进行再比较高甲基化低甲基化吗?谢谢!

作者: woshi    时间: 2015-7-2 09:43


你好!我想研究一个未知基因的DNA甲基化情况,想用MSP或BSP法,之前设计的引物扩增不出来,所以想请问你是用什么软件设计的MSP或BSP的引物的?谢谢!

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 09:43


cuturl('www.methdb.de')
推荐战友们访问此网站,以及此网站提供的一系列甲基化相关工具网站的连接,有帮助于解决上述战友的问题。

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 09:44


在当前国内浮躁的学术环境下,我不认为有几个人可以耐心的去设计优化出一个针对特定位点的MSP甲基化分析系统。即使国外设计好的MSP系统,其稳定的运行,得出有意义的科学的数据,不但需要严谨的精神,高额的耗费,而且需要高超的实验技术。MSP的难度,最好是普通PCR具备相当基础后再涉足此领域。BSP难度稍低点,也仅仅是比MSP稍低了点。占有们应有足够准备。
我实验引物多用在线软件Methprimer设计。
BSP测序数据用BiQAnalyzer分析。该软件下载安装后使用,需要JAVA。
二者均可从cuturl('www.methdb.de')找到连接。

作者: caihong    时间: 2015-7-2 09:44


楼上,我做了个基因的BSP,运气比较好,目的基因出结果了,送去测序,但不知道如何分析测序结果,不知有没有什么软件分析的,还有测序图如何看

作者: caihong    时间: 2015-7-2 09:46


楼上,我做了个基因的BSP,运气比较好,目的基因出结果了,送去测序,但不知道如何分析测序结果,不知有没有什么软件分析的,还有测序图如何看,请教了

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 09:46


是BSP产物直接测序,还是克隆后测序? 两者的意义是不同的. 我做的是克隆后挑单克隆测序. BiQAnalyzer分析。该软件下载安装后使用,需要JAVA。
可从cuturl('www.methdb.de')找到下载连接。

作者: remenb    时间: 2015-7-2 09:52


aifuhong ,我是BSP产物直接测序,请问如何看测序图

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 09:58


BSP产物直接测序 测的是许多甲基化情况不同的分子的混合体, 就我所知, 目前还没有专门针对此结果分析的软件. 需要自己对公司交付的测序图( 电子版的用测序结果的看图软件打开)进行分析, 看原来CpG位点是C还是T, 亦或者是C/T双峰, 及双峰高度的相对比例, 作出人工的CpG位点甲基化情况判断.

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 10:08

下面是本人博士论文中对直接测序结果分析的描述:
将测序结果去除引物,用在线程序MethBlast粗略分析与目的序列的同源性和甲基化情况,然后人工分析每个CpG二核苷酸位点的测序峰图,判断有无甲基化及其大致比例。本法依赖测序峰来识别甲基化和非甲基化,对样品中的低水平甲基化可能无法反映出来,也无法获得混合组织中少数异常细胞的甲基化谱。
附图说明一个CpG二核苷酸位点为双峰, 说明在该位点部分分子为甲基化,部分分子为非甲基化,


图片附件: 43158085.jpg (2015-7-2 10:08, 86.58 KB) / 该附件被下载次数 5
http://bbs.antpedia.com/attachment.php?aid=34308


作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 10:11


甲基化研究的方法问题, 至今缺乏稳固的根基. 即使公认的可以接受的方法, 仍然 经不起严格的考问. 这也就是美国人较浪漫的欧洲人较少研究甲基化的原因.
对于 MSP法, 95%和5%的甲基化, 结果是没有质的差别的. 个人认为, MSP系统,始终应该伴有质量控制标准品的检测, 即应把完全甲基化和完全没有甲基化的DNA与样品DNA同步处理修饰和扩增, 只有阳性和阴性控制的结果都正确时, 样品的结果才有意义. 测序, 无论是BSP直接法,还是克隆后,对于5%的甲基化或非甲基化都可能反映不出来.

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 10:12


相关疾病:
MSP首先是一种等位基因特异性PCR技术(ASP),而即使针对基因组DNA的
ASP技术(如SNP分型),都是非常容易出现假阳性、假阴性的,对反应体系、循环参数、操作等的要求非常严格。MSP引物针对修饰后的3.2碱基组成的基因组设计,又要如你所知的种种考虑,引物的选择余地很小,很难设计出高效、特异的MSP引物。修饰后的DNA又量小质差。所以整个MSP系统就象一根竖在桌子上的筷子。你可以找到那个平衡点,把筷子竖立起来,但一点微风就可以令其倒下。明天你就不一定能重复今天的结果。
其次,基因组DNA的修饰,转化率95%就是达标的,对于国人来说,甚至是优秀的。如此,对于MSP法结果分析来说,是致命的。5%的非转化,足够MSP显现阳性结果了。顺便说一句,转化率的评价方法本身就是受到质疑的。国人,无论是用试剂盒,还是自配转化试剂,很少有人去考虑转化率的。
再次,DNA的甲基化修饰,本身就不是绝对的。可以认为,100%甲基化几乎是不存在的。加以肿瘤细胞增殖活跃,基因组复制频频,营养供给不良,甲基化作为有序的耗能过程,其维持能力应是下降的。那怕你用的是单克隆细胞系,细胞之间都有甲基化异质性存在。
再次,组织特异性是基因组甲基化谱的基本特征,检材往往是多种细胞的混合体。即使是所谓的微切割技术,都是难免有其它细胞基因组污染的。
说了一大堆,甲基化还是值得研究的,非常有意义的。只是说我们应该以严谨的、科学的方法去研究。在还没有更好的方法时,应以严谨的、科学的态度去分析实验结果。

作者: xue258    时间: 2015-7-2 10:29

楼主说了这么多,我想体以下几点:
1,你说的95%转化(因该是修饰效率),5%的非转化,这些数据从什么地方得出?
2。楼主说了以上诸多考虑的因素,请问你在实际操作中,有什么心得,比如方便的话,能否介绍一下你们实验室做甲基化,从样本的选择(注意点),引物设计,模板DNA修饰及纯化,鉴定,PCR反应体系各个步骤的体会,供我们学习研究!

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 10:30


DNA修饰时,两个基本参数,转化率, 转化特异性. 非甲基化的C最好完全转化为U, 甲基化的C最好一个都不转化为U. 95%是最低可接受的. 一些软件的default value 都是95%. 具体是BSP产物的测序结果, 非CpG的C保留下来的不能超过该片段内总非CpG的C 5%. 鉴于CNG中的C也可能甲基化, 应灵活掌握该标准.

作者: xevin    时间: 2015-7-2 10:30


看了aifuhong博士发表的言论,深有感触,aifuhong在甲基化领域的研究确实化了不少心思,有自己的很多经验和心得,值得学习!我认真读了您的每一篇留言,很有收获。以下几个问题和您探讨(这里权且交流):
1、对于重亚硫酸氢盐脱氨基处理的效率,怎么评估?
单从实验来讲,体外甲基化一份DNA,做PCR,转克隆,应该至少挑10个克隆,对该序列10个以上的CpG岛做测序统计,来评估重亚硫酸氢盐脱氨基处理的效率!(我曾做了30个CpG岛的评估,转化效率达98%,因此判定此处理是有效的可以进行基于重亚硫酸氢盐处理的其它实验如MSP或COBRA)(关于CpG岛的定义我就不熬述了)
2、MSP难吗?
不难,96年建立该方法发了NAR上,现在是10年后了!
3、引物设计难一定参考文献吗?第一次做可以参考。我做了n多基因没有一个参考文献的,尽信书不如无书!我更相信事实依据。可以参考文献:Optimal primer design using the novel primer design program: MSPprimer provides accurate methylation analysis of the ATM promoter
4、如何知道MSP不是假阳性?或者,对自己设计的引物不自信?
因为定性PCR电泳条带是不足以说明任何问题的,只有测序比对序列才是“金”标准!
5、Bisulfite sequecing PCR(BSP),它的引物一般不含CpG岛,这样以保证能同等扩增甲基化和非甲基化的模板,然后转克隆测序,一般来说,至少是10个克隆;如果你只有1%的模板发生了甲基化,那么你最少得挑100个克隆才统计到!而MSP的灵敏度可以达到0.1%(参考:Methylation-specific PCR: A novel PCR assay for methylation status of CpG islands)
5、如何找一个基因的启动子区?
先搞清楚定义,然后在DXY上查一下,有个blog专门论述此问题!
6、如何定量评估差异甲基化?
见附件!
如果有什么问题,或者对表观遗传的一些问题感兴趣,可以点击进入一起讨论一起进步,
cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=64&id=10553215&tpg=1&ppg=1&sty=1&age=0')
有一个好的氛围,一个好的平台,是我们飞翔的基础!

作者: qianqin1977    时间: 2015-7-2 10:34

两位前辈都在,我想请教个问题,我做MSP,癌组织及癌旁组织均为部分甲基化,感觉价值不大,不知有何建议。现在BSP与MSP比较,各有什么优缺点呢?
作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 10:35



QUOTE:
原帖由 xevin 于 2015-7-2 10:30 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

看了aifuhong博士发表的言论,深有感触,aifuhong在甲基化领域的研究确实化了不少心思,有自己的很多经验和心得,值得学习!我认真读了您的每一篇留言,很有收获。以下几个问题和您探讨(这里权且交流):
1、对于重亚硫酸氢盐脱氨基 ...

1,  重申本人在前面的一句话:甲基化是值得研究的,非常有意义的。只是说我们应该以严谨的、科学的方法去研究;在还没有更好的方法时,应以严谨的、科学的态度去分析实验结果。
2,  本人俗务缠身,本话题开始即是为了同时回答两个战友的问题而开立的: “兼答 幽兰芬芳 和 yyy0621”。其后的帖子或为直接回应战友跟帖,或为回应战友PM而后顺手贴过来的。唐突之处,请战友们谅解。
3,  搞临床的需要可行的方法,支持自己的研究,方法越经典越好。搞基础的需要对方法进行批判,不断的改进方法,为研究问题的提供更科学、合理的方法。任何技术方法都是不断发展和完善的。
4,  知道、了解一个方法,和真正掌握一个方法的意义是完全不同的。任何方法都有其适用的范围,都有其优点和缺点,只有科学合理的使用方法,才能得出有意义的结果。并且结果的科学意义和科学价值的判断也离不开对方法的分析。
5,  经典的方法,成熟的方法更容易被滥用。不是早就发明的技术神秘,经不起严谨的实验检验和重复。而是那些对技术方法一知半解,随自己的心意乱用的人的实验结果,经不起严谨的实验检验和重复。MSP不难,保证MSP的结果有意义,有科学价值,难。 例如,半定量RT-PCR,循环次数必须控制在指数增长期,而指数增长期的循环次数有与模板拷贝数相关。要达到定量目的,必须调整样品模板浓度,并在一定循环次数内结束PCR反应。这里的模板浓度、循环次数应该在建立某基因的半定量RT-PCR系统过程中确定,并在标准曲线制作和样品检测中执行。请导师们给学生以足够的时间去掌握技术,而不要急着要那么一张电泳图。
6,  有一个好的氛围,一个好的平台,是我们飞翔的基础!

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 10:35

1、对于重亚硫酸氢盐脱氨基处理的效率,怎么评估?
单从实验来讲,体外甲基化一份DNA,做PCR,转克隆,应该至少挑10个克隆,对该序列10个以上的CpG岛做测序统计,来评估重亚硫酸氢盐脱氨基处理的效率!(我曾做了30个CpG岛的评估,转化效率达98%,因此判定此处理是有效的可以进行基于重亚硫酸氢盐处理的其它实验如MSP或COBRA)

=============================================================================================================

以下问题,请教:
1,  体外甲基化反应是否按设计发生了,如何确认?
2,  所谓做PCR,应该是指BSP,而BSP引物针对处理转化的DNA序列设计,本身只扩增处理转化的。也就是只把转化了的分子挑出了测序,那自然是转化效率很高了。是否存在此问题,请讨论。
3,  如何克服克隆偏性Cloning bias等假象?参见 Methods. Volume 27, Issue 2, June 2002, Pages 101-107. Identification and resolution of artifacts in bisulfite sequencing
4,  挑够了10个克隆,结果的可信度如何呢?The limited number of clones examined per sample drastically reduces the statistical power of bisulfite sequencing data. If, for example, 5 out of 10 clones are methylated at any given site, the 95% confidence interval for the true proportion of DNA methylation at that site is between 18.4 and 81.6%. Also, if a difference in DNA methylation of 20% between two samples (from 50 to 70%), is to be statistically validated, 100 clones for each sample would have to be sequenced and analyzed. Brena RM, Auer H, Kornacker K, Hackanson B, Raval A, Byrd JC, Plass C. Accurate quantiAccurate quantification of DNA methylation using combined bisulfite restriction analysis coupled with the Agilent 2100 Bioanalyzer platform.Nucleic Acids Res. 2006 Feb 7;34(3):e17 Nucleic Acids Research 2006 34(3):e17
5,  “对该序列10个以上的CpG岛做测序统计,来评估重亚硫酸氢盐脱氨基处理的效率!(我曾做了30个CpG岛的评估,转化效率达98%,------”该句内一个CpG岛是指一个CpG二核苷酸?还是一个包含很多CpG二核苷酸的CpG Island.
6,  无论MSP、BSP,引物可以自行设计,也可以参考文献。对文献应该学会甄别,区分好坏。文献已经有的,并且符合研究目的的,尽量采用之,可少走弯路,节省国家经费。即使自行设计,肯定也是要参考文献的。我们都是要站在巨人肩膀上的吗!!!本人也做了N多基因,全部是自行设计的引物系统,但不得不看大量的文献。吾辈怎敢拿着国家的钱,去撞运气,总是要严密论证的吗。

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 10:43


Accuracy and precision are conventional criteria in evaluating the performance or uncertainty of an analytical method. Accuracy is practically represented by difference of the result from a method and that from a reference one while precision is represented by the degree of variations of the results as expressed in CV. For quantitative analysis of DNA methylation, no reference method with which other methods could be compared is available yet. Bisulfite-mediated sequencing is currently accepted as one to produce most detailed and quantitative information on DNA methylation. Nonetheless, the bisulfite sequencing itself is not an absolute or acceptable reference method because it employs several manipulation processes through which distortion of information could be accompanied.
Incompleteness of bisulfite-mediated conversion of bases as well as biases in PCR, sub-cloning and sequencing processes are major potential sources of analytical uncertainties. Owing to unavailability of a reference method, the overall accuracy of our method for quantification of DNA methylation could not be directly assessed. Instead, only comparisons with the result of bisulfite-mediated sequencing are presented as indirect indicators while the shortcoming of the approach is fully acknowledged. Compared with bisulfite sequencing, our method does not include sub-cloning and sequencing procedures albeit the same bisulfite conversion and PCR procedures are included. Therefore, our method is expected to yield a quantification performance with a smaller or similar level of measurement uncertainty compared with that from bisulfite sequencing.
Nucleic Acids Res. 2006 May 5;34Musical Note:e61. Yang I, Park IY, Jang SM, Shi LH, Ku HK, Park SR. Rapid quantification of DNA methylation through dNMP analysis following bisulfite-PCR.

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 10:44

以下问题,请前辈解释:
1,  体外甲基化反应是否按设计发生了,如何确认?
2,  所谓做PCR,应该是指BSP,而BSP引物针对处理转化的DNA序列设计,本身只扩增处理转化的(注意,与是否甲基化无关)。也就是只把转化了的分子挑出了测序,那自然是转化效率很高了。是否存在此问题,请讨论。
3,  如何克服克隆偏性Cloning bias等假象?参见 Methods. Volume 27, Issue 2, June 2002, Pages 101-107. Identification and resolution of artifacts in bisulfite sequencing
4,  挑够了10个克隆,结果的可信度如何呢?

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 11:07

“对该序列10个以上的CpG岛做测序统计,来评估重亚硫酸氢盐脱氨基处理的效率!(我曾做了30个CpG岛的评估,转化效率达98%,------”

======================

CpG岛的定义还请明确。
作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 11:12

该句内一个CpG岛是指一个CpG二核苷酸?还是一个包含很多CpG二核苷酸的CpG岛(CpG Island)。二者的差别太大了。
作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 11:13

Bisulfite sequecing PCR(BSP),它的引物一般不含CpG岛,这样以保证能同等扩增甲基化和非甲基化的模板,然后转克隆测序,一般来说,至少是10个克隆;如果你只有1%的模板发生了甲基化,那么你最少得挑100个克隆才统计到!而MSP的灵敏度可以达到0.1%(参考:Methylation-specific PCR: A novel PCR assay for methylation status of CpG islands)

==============================================================================================================

BSP的引物一般不含CpG二核苷酸,我们期望能它能同等扩增甲基化和非甲基化的模板,但理论上是不可能的,实际上也已经证明了这种不可能。因为甲基化和非甲基化的模板在处理后GC含量有显著差异。

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 11:14

而MSP的灵敏度可以达到0.1%(参考:Methylation-specific PCR: A novel PCR assay for methylation status of CpG islands)

===============================================================================================================

MSP的灵敏度可以达到0.1%和MSP的灵敏度是0.1%是完全不同的。
MSP的灵敏度可以达到0.1%,所以99%的甲基化和1%的甲基化,MSP的结果没有区别。而99%的甲基化和1%的甲基化,其生物学意义的重大差别是不言而喻的。
MSP的灵敏度可以达到0.1%,所以98%的转化率,给假阳性、假阴性结果提供了足够的空间。

作者: vvmmoy    时间: 2015-7-2 11:14


最近有点忙!
1、0.1%而不是1%;
2、1个CpG是CpG Island,多个是CpG Islands(CGIs);
3、关于CpG岛的定义(我们母语一个和多个CpG是没有复数区别的,确实经常产生这样的口误或者歧异!):参考文献:An evaluation of new criteria for CpG islands in
the human genome as gene markers(注意这里是复数)
BIOINFORMATICS Vol. 20 no. 7 2004, pages 1170–1177
DOI: 10.1093/bioinformatics/bth059
忙完这些天再来讨论,期待中!
平安夜平安幸福!NEW YEAR! My friends!

作者: vvmmoy    时间: 2015-7-2 11:15


啊,那我检测基因的甲基化依据现有的实验方法MSP法是否就没有什么意义

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 14:56



QUOTE:
原帖由 vvmmoy 于 2015-7-2 11:15 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

啊,那我检测基因的甲基化依据现有的实验方法MSP法是否就没有什么意义

不能这样说,医学实验的结果一般都是比较的、相对的.只要保持实验组和对照组条件的一致性,结果的可比较性,两组结果有差异,仍然有意义的,反映问题的。
作者: ending    时间: 2015-7-2 14:58


你好,我刚开始准备作这方面实验,有很多东西不懂,看了你的帖子很受启发。有个问题想请教:我想研究一个未知基因的甲基化情况,我没有p出来它的启动子区,只是p出第一外显子,可是测序只有185bp,有人说太短,不能估计有没有cpg岛,我不是很懂,所以想请教一下,是这样吗?我是不是不能进行下去了?请帮帮忙,非常感谢!

作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 14:58

所谓"未知基因"是从何种意义上来说呢?既然未知,何以知道p出的是第一外显子。基因的启动子区cpg岛,有可能包括第一外显子的部分或全部。你提供情况太少,不好分析。
作者: ending    时间: 2015-7-2 15:00

真不好意思,说的不清楚。是这样的,我做的homeobox的其中一个基因,这个基因在人和小鼠中有,牛中有第一外显子的,我要做的是羊的,羊中没有,我又不会设计引物,所以参考文献用牛的第一外显子序列设计的引物去p的,p出来去测序。接下来我想用得到启动子序列,可是就不知如何做了,有同学说5‘启动子区不能用设计引物p,我对分子方面真的是个新手,所以请帮帮忙,谢谢了!
作者: 园丁##    时间: 2015-7-2 15:02



QUOTE:
原帖由 ending 于 2015-7-2 15:00 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
真不好意思,说的不清楚。是这样的,我做的homeobox的其中一个基因,这个基因在人和小鼠中有,牛中有第一外显子的,我要做的是羊的,羊中没有,我又不会设计引物,所以参考文献用牛的第一外显子序列设计的引物去p的,p出来去测序。接下 ...

blast联配分析人和小鼠的启动子序列,找出保守区设计引物,P羊的(GC含量可能比较高,注意调整反应体系和循环参数),测序,结果再与人/小鼠blast联配,如果同源性高,基本可以确定就是羊的该基因的启动子序列。每次可能只能搞定启动子一部分。要搞出整个启动子,需要多设计几对引物。最后就可以拼出整个启动子了。
作者: dog002    时间: 2015-7-2 15:03


相关疾病:
智力障碍
老师您好;
我是新手,我做的是MSP,我的引物是引物公司设计的,现在实验已经做结束了,结果也挺好,但我不知道CPG岛怎么找,它的甲基化基因位点怎么找,我是中医类的研究生,对这个现在好像是在读天书,望请赐教这些弱智的问题!





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