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标题:[分享帖]细胞爬片的保存和抗原修复问题总结

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我做过的是血管平滑肌细胞的爬片,当时一位临床病理科的老师告诉我用70%乙醇固定,在4度固定12小时以上,做免疫组化比较好,我做着效果还好。关键是配多聚甲醛挺麻烦,还要60度水浴才溶解,呵呵,本人就图个简单了。
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不用抗原修复,用1%Triton-PBS孵育可有助于暴露抗原。

我现在做的BAX和BCL-2是用丙酮固定,不需要抗原修复,可以直接做组化了,效果还可以.
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细胞爬片用于免疫组化要不要脱蜡水化?要不要抗原修复啊??

因为细胞爬片本来就不用石蜡包埋,一般固定之后,可以冻于-20长期保存;实验时需要水化,一般20分钟左右;抗原修复不是必须的,因为细胞爬片要比组织切片抗原暴露好和保存的好,所以不需要修复。
但我看到过有的病理老师做Tunel时修复了一下,不过没什么影响。个人喜好的问题。
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细胞爬片的免疫组化是否需要抗原修复,如果需要应该用什么方法?另外免疫组化中应该注意什么问题?是否时间较长就容易出阳性结果?谢谢
用多聚甲醛4度固定,一般不需修复,根据需检测的抗原和抗原所处的部位而定,4度过夜的一抗孵育条件较易出阳性结果。
的确不需要。
不需要抗原修复,抗原修复主要针对的是石蜡切片因固定剂、石蜡的制作过程对抗原的交联或封闭作用。
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冷丙酮固定, 需要多一步tritonX100处理,以便于增加细胞的通透性。
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要用Triton X-100做细胞穿孔的。

抗原修复主要针对的是石蜡切片因固定剂、石蜡的制作过程对抗原的交联或封闭作用。单细胞所用的固定剂和石蜡不一样,过程不是很繁琐,固定时间也短,不用修复,但要充分灭活。

很多文献都介绍用冷丙酮或乙醇固定。我比较了两者的效果,觉得用80%的冷乙醇固定10分钟,固定效果比较满意。用纯丙酮或乙醇固定,细胞收缩比较明显。
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加不加Triton是和您要染细胞的抗原分布和用途有关:Triton的作用是在细胞膜上打孔,以便抗体进入!
a)如果要染抗原分布在细胞膜上面,那么就不能加Triton;
b)但是如果抗原分布在胞浆或核内,那加入Triton就显得比较重要(虽然细胞在固定后的通透性较活细胞大,但是还不至于让任何东西都过去!);
c)另外作电镜时一定不加Triton。
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直接把培养板取出,吸出培养基,然后用预热的PBS洗三次(5min*3),就用4%的多聚甲醛固定做免疫组化,其余的步骤就没什么特殊了!
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DAB显色完,不用酒精脱水,直接封片么?

细胞还可以,但是组织切片的最好还是酒精脱水。这样的观察结果会好一些!
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聚甲醛固定后,tritonx-100通透,也可以不需要抗原修复的,正如xdb86所言在于你检测的抗原的要求,先不用修复,出不来再试一试!
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