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标题:[分享帖]细胞爬片的保存和抗原修复问题总结

一叶[使用道具]
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整理过程中一些细胞爬片的小细节技巧

(1)爬片前最好用多聚赖氨酸或者层粘蛋白或者胶原溶液处理玻片,未处理过的细胞不容易贴壁,细胞系还好,原代细胞很少能贴得牢。这一步至关重要,否则在后面用PBS洗片时很容易将细胞洗掉。用这些促进细胞贴壁的溶液处理玻片后,放到培养皿之前需要用培养基冲洗一到三遍!层粘蛋白和胶原还好,多聚赖氨酸有几次我没冲结果细胞全部不贴壁。
(2)PBS对玻片是冲洗还是浸泡,我个人认为浸泡好,我吃过冲洗的亏
(3)4%的多聚甲醛或者别的固定液的温度是多少,有人认为4°C的好,有人认为37°C的好,我个人感觉,娇贵的原代细胞先在常温下固定较好,然后放到4°C冰箱中。我发现直接用4°C的溶液会造成细胞冷休克,从片上脱落。
(4)染色滴加抗体时,为了节省抗体,可以先把抗体滴加在干净的载波片上,然后玻片的细胞面朝向抗体倒扣,同时注意防止气泡 和玻片的正反。一般24毫米的玻片只需要30-50微升抗体。当然如果操作不熟练,抗体又足够,那就直接在玻片的细胞面上加抗体吧 。
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一叶[使用道具]
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爬片的前期处理
(1)取干净的盖玻片(剪去一角,以作为正反的标记)若干,用洗衣粉轻轻擦洗后烤干(注意轻柔,不要留下明显痕迹,方便以后观察细胞)。
(2)硫酸重铬酸钾过夜。
(3)取出盖玻片后,用自来水反复冲洗20遍。
(4)用一蒸水漂洗10分钟,三蒸水冲洗3遍。
(5)晾干后泡纯酒精过夜(主要是脱脂,也可用95%酒精),用镊子夹出(不能用手去接触玻片,否则应重新泡酒精脱脂),蒸馏水清洗后自然晾干(烤干容易使玻片留下水迹,而晾干的则清新干净)。
(6)高温高压消毒。
(7)再根据实验要求考虑是否包被多聚赖氨酸。
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一叶[使用道具]
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个人的最后总结:

细胞爬片做组化不需要抗原修复,但是需要用tritonx-100通透,如果不放心的话,先不用修复,出不来结果的时候再试一试修复!
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爱老虎游tt[使用道具]
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借形态宝帖求助高手!
我最近爬了不少片子,固定前镜下看细胞情况不错,细胞形态比较完整,铺展的也较开,结果当我每次用PBS洗2遍,75%酒精固定5-10分钟,然后再用PBS洗2遍后晾干并存放于4度冰箱,一周左右进行免疫细胞化学实验。
每张玻片出来的结果:镜下细胞的形态残破不堪,胞膜破碎不完整,甚至部分变形的比较厉害,直接导致组化结果不可信。一直不知何故,请几位形态版版主和各位高手帮忙分析一下,非常感谢!

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酒精固定的细胞我只做过一次,还是直接固定完就接着做IHC,没出现什么问题。
我觉得你这种情况会不会是PBS漂洗时震动太大破坏了细胞的贴壁效果?我每次PBS洗的时候都是把爬片放在PBS里浸泡,不晃动培养皿,每到最后一次漂洗完的时候都在镜下看看细胞形态。还没有出现过你的那种问题。
还有一点就是细胞固定前第一次洗的时候我用的都是4度的PBS,曾经用过一次常温的细胞形态就不太好,不知道这个有没有关系?
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leifengta[使用道具]
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酒精固定的细胞我只做过一次,还是直接固定完就接着做IHC,没出现什么问题。
我觉得你这种情况会不会是PBS漂洗时震动太大破坏了细胞的贴壁效果?我每次PBS洗的时候都是把爬片放在PBS里浸泡,不晃动培养皿,每到最后一次漂洗完的时候都在镜下看看细胞形态。还没有出现过你的那种问题。
还有一点就是细胞固定前第一次洗的时候我用的都是4度的PBS,曾经用过一次常温的细胞形态就不太好,不知道这个有没有关系?

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楼上说得有道理,准备下次爬片留意下。
我用的PBS都是常温放置的,而且PBS漂洗时会来回晃几下,再加之我的细胞状态不太好,所以在免疫组化国程,可怜的细胞便越来越少,剩下几个也成变形金刚了!哎~不知和酒精固定有没有关系呢?据说酒精固定对细胞损伤大?那位高手问答下,谢谢啦!
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yueban-1147[使用道具]
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有哪位高手帮下忙。做细胞爬片染色时,所选用盖玻片有特殊要求吗?如无自发荧光盖玻片,因为我想做三维成像,有时片子背景比较深,很难做。有人用过吗?帮忙介绍一下!在哪儿可以买到无自发荧光盖玻片!有哪些公司有卖啊?多谢!
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zwsyrt[使用道具]
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细胞爬片:直接把培养板取出,吸出培养基,然后是用预热的PBS洗三次(5min*3)还是冷的PBS洗三次?用酒精、丙酮、多聚甲醛固定各有什么优缺点,哪种固定比较好?
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flower-201[使用道具]
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据我的感觉(免疫荧光),有机溶剂如乙醇、丙酮做出来会干净点,但会使细胞收缩,抗原向核周集中,形态不太好。多聚甲醛细胞形态保持不错但非特异性高点,可能跟前者是脱水剂后者是交联剂有关
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yysr238[使用道具]
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PBS还是用温的好,冰PBS很容易脱避
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idea2011[使用道具]
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求助:
我最近在作DC悬浮细胞的爬片,借贵宝地询问一下。
我的步骤是 ①将悬浮细胞离心,而后将细胞配成一定浓度5×10(5)
②将细胞液滴在多聚赖氨酸处理过的载玻片上,自然风干
③4%多聚甲醛固定20min ,晾干
④缓冲甘油封片
做完之后的镜下观察细胞的数目非常少,一个视野只有10来个细胞,完全达不到5×10 5次方浓度
请问有什么办法解决么?
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