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标题:[讨论帖]神经干细胞、神经元培养互助小组

greenbee[使用道具]
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另外还要请教一下,你的N2是什么时候买的,是否需要开证明?因为亚硒酸钠是剧毒要开很麻烦的证明,前些日子要单买亚硒酸钠因为这个头都 大了。
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911[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 greenbee 于 2012-6-8 16:44 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
另外还要请教一下,你的N2是什么时候买的,是否需要开证明?因为亚硒酸钠是剧毒要开很麻烦的证明,前些日子要单买亚硒酸钠因为这个头都 大了。

应该不用,直接找试剂代理公司就可以了,B27 supplement 620元,N2 supplement 500元,都是 GIBCO公司的
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biabiade[使用道具]
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我今天又做了一次上流式细胞仪测凋亡率,还是不行,细胞量太少,我是用
0.125%的胰酶消化10分钟,然后过100目筛板,500转离心5分钟,去上清液,沉淀用PBS悬浮吹散,我已经失败很多次了,不是细胞碎片太多就是细胞不够,真是很郁闷,各位高手有没有好的办法?
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yes4[使用道具]
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我是做神经干细胞原代培养再分化为神经元的,我养原代没用N2,我的神经球长的也不错。
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yes4[使用道具]
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有一个问题想请教各位,如果神经球向神经元分化,分化前还需要离心吗?多谢!
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831226[使用道具]
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我刚从上海买的sk-n-sh,请教各位大侠:
1、消化最好用什么?我用的是0.25的胰酶加0.02EDTA,好快啊,20秒左右,只好回收用1500转离心5分钟。
2、培养液我加的是10%的胎牛血清。
但细胞长的不是很好,不够密,生长速度也慢,请各位有经验的前辈指教。
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zhenxin[使用道具]
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我今天又做了一次上流式细胞仪测凋亡率,还是不行,细胞量太少,我是用
0.125%的胰消化10分钟,然后过100目筛板,500转离心5分钟,去上清液,沉淀用PBS悬浮吹散,我已经失败很多次了,不是细胞碎片太多就是细胞不够,真是很郁闷,各位高手有没有好的办法?

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你试一下用胰酶-EDTA消化, 而且应该在镜下控制反应时间,胰酶-EDTA消化液少一些, 或者多放一些1或2 分钟就倒出去,当细胞的突触收回到近圆形时,加入含血清的培养液中止消化,轻轻吹打即可.做流式一定要保证细胞的良好状态,所以首先要选取生长状态好的细胞, 其次,消化一定要把握时机,即不能消化过度,也不能消化不足, 这样容易吹打过度产生碎片,再次,流式对细胞的数量也有要求,不能过多也不能过少. 过滤与否并不重要,如果细胞数目太少的话就不必了,500转速度太低了,1000转5分钟就行了,我们上学期做了流式,细胞状态很好,实验也比较顺利.
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zhenxin[使用道具]
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我们做了近一年半的神经细胞培养,在细胞原代培养中,我们经历的最大的问题就是细胞的污染问题, 所以在神经细胞的培养过程中,首先要树立很强的无菌观念,认真做好消毒和准备工作.其次在操作过程中,胰酶的消化时间也是细胞生长的一个关键因素,不能消化时间过久,我们一般是采用机械吹打和胰酶共同作用的方法, 细胞一消化成单细胞就立即中止消化,再次, 在整个的操作过程中,吹打和处理的手法一定要轻,缓,以免细胞受到损伤,影响生长.
一点体会与大家共勉.
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zhenxin[使用道具]
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大家好,看到这么多人都作这方面,心里真高兴。
我是一刚刚开始做 “神经元“ 培养的新手。以后会有许多不懂的地方,请大家多指教哦。
今天我主要有3个问题想问问:
1、为了省钱,培养基是不是一般都买干粉阿?做一套试验大约需要多少?如果没有时间限制,我可不可以一次大量买够,然后-20度冻存阿?
2、本来打算用10%胎牛血清,可试验老师告诉我说最好用10%胎牛,加10%马血清。是这样吗?不用马血清养的效果是不是不好啊?那去哪里买马血清?
3、如果第一次养,是不是选胎鼠比较容易些?我怕用新生24小时内乳鼠养不活呢。:(

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1.培养基一般是买DMEM干粉再加一些生化试剂, 你可以现用现配,不用冻存.至于用多少得以你的试验来定.
2.培养神经元是要加马血清的,我也不是很清楚它的原理, 可能每种细胞都有自己适合的环境吧, 有胎牛血清的公司一般也有马血清,你问他们就行了
3.我们培养是用的新生大鼠, 24小时内 乳鼠肯定可以, 主要是比胎鼠方便, 我们也养过胎鼠神经元,没有发现显著性差别
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zhenxin[使用道具]
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我今天又做了一次上流式细胞仪测凋亡率,还是不行,细胞量太少,我是用
0.125%的胰酶消化10分钟,然后过100目筛板,500转离心5分钟,去上清液,沉淀用PBS悬浮吹散,我已经失败很多次了,不是细胞碎片太多就是细胞不够,真是很郁闷,各位高手有没有好的办法?

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注意:1000转离心是去上清, 500转离心是去沉淀
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