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标题:[讨论帖]常用原代动物细胞培养

大白菜[使用道具]
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大家好,有谁培养过大鼠肠成纤维细胞吗?都说成纤维细胞是最好培养的,可我折腾了三个多月也没一点进展,最好培养的我都不行,本人深受打击,谁能帮帮我啊?谁来救救我吧!
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lixi559[使用道具]
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我今天第一次上这个论坛是个新手,请大家多多指教,斑竹多多关照!我一直都在做乳鼠的心肌细胞培养,看了上面两个帖子,在补充一点自己的心得:我们用胰酶做了好多次,各种浓度以及与胶原酶的各种复合浓度,觉得效果都不是很理想,细胞状态不大好,后来就单用0.2%的胶原酶,细胞状态很好!48小时左右后开始搏动。
若还有用胰酶觉得不够理想的,请试用以下上面的方法!
以后再有其他体会继续支持!
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ritou1985[使用道具]
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脐静脉内皮细胞培养:
准备的药品:pbs,199培养液,I型胶原酶(SIGMA)。
主要的器械:手术剪,镊子,止血钳,丝线,鞘管(PTCA用的动脉鞘的扩张管,6F或7F)。
首先,以PBS漂洗脐带1-2次,用剪刀将脐带剪成数段15CM左右长短(本人认为这个长度较为合适)。
之后,以止血钳提起一段脐带的一端,将鞘管插入脐静脉中,并经该鞘向静脉内注入PBS10-8ml左右(最后注入空气吹净残留液体),后以丝线将另一端结扎(一定要扎紧),并从鞘管注入适量胶原酶,一般1ml(0.1%)足以,并以止血钳将该端钳闭。后将如此处理的脐带放入小烧杯中,在温箱中孵育10-15分钟(视酶的活力而定)。
最后将消化后的脐带轻轻揉捏2-3次,将结扎线及止血钳除去,后经鞘管向内注入199培养液(8-10ml就可以了,一次即可),将冲刷下来的酶液收集到离心管中,1000rpm离心5-6分钟,后倾去培养液,加入事先配制好的内衣细胞培养液(199,20%FBS,双抗,内皮细胞生长因子),吹打数次制成细胞悬液,接种入培养瓶。一般一段脐带所得细胞放入一个25CM培养瓶(最好是一次性的塑料瓶)。
注意:
1如果培养瓶内有较多残血,先不要紧张,因为这样并不影响内皮的生长,第二天予换液一次即可。
2一定要确保有足够数量的内膜消化下来,否则细胞生长缓慢影响质量(如离心后,管底的白膜-消化下来的内膜较少,必要时可两段脐带合为一瓶)
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我正准备培养大鼠的神经元细胞,难度挺大的,能不能加入你们啊?虽然是新手,但在培养的过程中也会有体会,能在这和大家一块分享吗?
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toy[使用道具]
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SD大鼠VSMC的原代培养(贴块法):
实验材料:手术剪1把、手术钳2把、眼科剪刀2把 、眼科镊子1把 、大头针4个、手术刀片、无菌1×PBS约500ml 20%FBS的DMEM、5ml小皿3个、 10ml大皿1个、杀鼠板1块。(以上均为无菌物品)
实验步骤:

1、 150-200gSD-大鼠,短头,浸入75%的酒精中15min
2、 置入超净台中,将大鼠固定于杀鼠板上,在无菌条件下打开腹腔,分离出胸主、腹主,摘出。
3、 PBS清洗3遍,剥去外膜,用手术刀片刮去内膜,留下中膜并将其移入1ml的培基中、剪成1×1mm大小组织块。
4、再将PBS清洗组织块,移入25ml的培养瓶中,用尖嘴弯管均匀贴好组织块,放入37度5%CO2的培养箱倒置培养6小时后,待组织块贴壁后,再加入2.5ml培养液后放回37度5%CO2的培养箱中。
注意:最后加入2ml培养液时应使其顺无组织块的皿边缘缓慢流下,勿使组织块吹下。
5、 随后每3天予以全量换液。
6、 3-5天后可见组织块周围有细胞爬出,大约2周后80%融合。
本人曾做过3个月的SD大鼠VSMC的原代培养,基本上的所有的障碍都遇到过,现在已做的相当成功,并乐意与大家分享经验!
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feima+[使用道具]
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脾脏单个核细胞悬液的制备
(1) 大鼠断颈处死后,无菌取脾置于消毒平皿中称重;
(2) 超净工作台上置10cm直径无菌平皿,加入5~10ml D-hanks平衡液 ,置一80目的不锈钢筛于平皿中,脾脏置于筛网中,用剪刀剪碎脾,用5ml玻璃注射器针芯轻轻捻磨脾脏,使分散的细胞滤过金属网进入平皿的液体中, D-hanks冲洗一次;
(3) 用吸管吸取冲洗液,200目的钢筛过滤一次后收集至离心管中;
(4) 1000rpm,离心5~10min,弃上清;
(5) 加入约1ml双蒸水,吸管打匀后20s后加入等量的1.8%的NaCl溶液,然后加入大量D-hanks调节渗透平衡,以***红细胞,但对白细胞没有影响;
用D-hanks液洗涤细胞2~3次,用含有1mM/L的谷氨酸胺、100IU/ml青霉素G、100μg/ml链霉素、10%的胎牛血清的RPMI-1640重悬细胞,调节细胞浓度为5×106/ml,台盼兰染色检测细胞存活率大于95%;
(7) 接种至培养板或培养瓶中。
我摸索了近一个月时间,培养还不错,不过如果要长期培养要加il-2刺激,很高兴和大家分享经验!
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哪位师兄or师姐做过垂体瘤细胞的原代培养,有什么需要特别注意的地方吗?给点指示!我最近在学习中……
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铜雀[使用道具]
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我是一个10多年临床医生,说起原代细胞培养我就感到很气愤,因为我在去年读研究生期间为了人类滑膜原代细胞培养走了很多弯路,被很多国内文献欺骗过,请各位战友不要过分相信国内文献的方法,避免像我一样差不多用两个月时间摸索实验条件,在心理紧张的条件下生活。我的文章正在发表,请大家只看不要复制,明年3月份后可以引用我在《中国临床康复杂志》或《中华类风湿杂志》的文章里“材料与方法”中的内容。如果需要实验过程中操作方法图片可以与我联系。
人类滑膜原代细胞培养:
1、将切下的组织在手术台上请护士将标本放入低温生理盐水中(可不要动它),在手术完成时将标本放入PBS冰水液中并放入消毒的容器中带回实验室;
2、在超净台中将标本放入培养皿中,加入α-MEM洗涤;
3、获得组织切开,仔细辨认于关节反折处及增生的白色光滑的滑膜组织,附于关节软骨面的增生的血管翳也为滑膜组织(可作另一管消化),仔细剔除脂肪组织,用α-MEM洗二次(以去除红细胞),放在小青瓶中用解剖剪锐性切碎
4、用双倍获得组织的体积含有4mg/mlⅠ型胶原酶的α-MEM消化37℃孵育120分钟(在此期间震动混匀数次);
5、30分钟后收集第一管细胞:细胞悬液经70μm细胞滤网过滤,用1500-2000转离心6分钟,上清为Ⅰ型胶原酶加入未过滤网的组织,继续用于消化;
6、离心管底细胞用α-MEM离心洗涤2次,每次用α-MEM重悬浮后用1500-2000转,离心6分钟,最后一次用记数板观察到有细胞。细胞最终悬浮于含有10%胎牛血清的α-MEM中,接种到培养瓶中培养。
7、60钟后收集第二管细胞:细胞悬液经70μm细胞滤网过滤,用1500-2000转离心6分钟;用α-MEM洗2次,每次用α-MEM重悬浮后用1500-2000转离心6分钟,最后一次用记数板观察细胞并计数。细胞最终悬浮于α-MEM含有10%胎牛血清中,接种到培养瓶中培养。
8、必要时可做第三管细胞收集;并立即作原代滑膜细胞培养。
9、每2-3天换液一次。
体会:
1,虽然国内外文献有组织块培养法获得滑膜细胞,但我试过,没有获得滑膜细胞,可能方法没掌握好或实验条件不同;
2,我探索过用0.25% trypsin或0.25% trypsin+ 0.02%EDTA 或 collagenaseⅠ或collagenaseⅡ消化细胞或合用,只有单用collagenaseⅠ有用、最好;
3,机械法很难获得细胞;
4,全培用α-MEM或RPMI1640或DMEM,加10%胎牛血清。不能用小牛血清,胎牛血清用国产即可
5,必须用Ca-free的PBS。
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铜雀[使用道具]
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这是我在研究生期间的实验探索,文章发表在《第一军医大学学报》2004年第五期《s-RANKL体外诱导人外周血CD68+单核细胞分化破骨细胞研究》的“实验方法” 上,在这里主要讨论实验体会,请各位战友批评指正。
人PBMC分离和培养
1,将静脉血20ml用ACD抗凝剂以容积比血:抗凝剂=9:1抗凝处理
2,按血:分离液=1:2注入国产淋巴细胞分离液上层,400g 20℃离心30分钟
3,交接层重浮于4倍体积的RPMI1640并通过离心法200g,10min洗三次
4,获得细胞可做分选或其他实验。
体会:
1,实验中我用过肝素方法抗凝,但效果不好,因为肝素抗凝后交接层混浊,洗涤后没有细胞。后来是一位老师推荐我用ACD抗凝剂,效果very good
2,实验用的是国产淋巴细胞液(天津TBD),没有用过进口的Ficoll/Paqnl
3,分层时的离心温度只能在20-25℃,过高细胞容易死亡或破坏,过低分层效果不好。我刚开始不知道,试过用5℃离心,其结果是一塌糊涂
4,不能使用角离心机。
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一叶[使用道具]
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我是一个10多年临床医生,说起原代细胞培养我就感到很气愤,因为我在去年读研究生期间为了人类滑膜原代细胞培养走了很多弯路,被很多国内文献欺骗过,请各位战友不要过分相信国内文献的方法,避免像我一样差不多用两个月时间摸索实验条件,在心理紧张的条件下生活。

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所以本贴也标明了,希望战友们不是引用文献,而是把自己的经验,将自己的成熟的方法奉献出来,当大家在奉献自己真实的实验经验的同时,大家才能享受到其他人真实的实验经验。

青衫自己也会有一些方法提供给大家,因为做过的原代培养比较多,估计有十来种吧,不希望和大家重复,并且有的方法做得好,有的不好,所以暂时没有贴出来。
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