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标题:【求助】神经细胞原代培养细胞成团的原因?

wanglaoshi[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 wanglaoshi 于 2012-10-7 14:54 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

另附一张高倍镜下的,  

我怎么没有发现有神经元存在??
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wanglaoshi[使用道具]
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我怎么没有发现有神经元存在??

————————————————————————————————————————————————————————

因为我想要的就是没有神经元和成纤维细胞,只有星形胶质细胞和小胶质细胞才对,这是不加阿糖胞苷14天时的照片。
请问midas,这里面都有哪些细胞?
多谢指教.
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gmjghh[使用道具]
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怪不得!
有较长突起,但突起又是较粗的为星形胶质细胞;
生长在众多细胞之上,折光性强,体积又小的是小胶质细胞,
有没有成纤维细胞不太好说,应该有一些。
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1.对于接种密度,发现用计数板不准,所以现在我都是凭经验,四个乳鼠接种一瓶,这样正好一周左右可以传代。
2.一次性的塑料培养瓶可以不用明胶等处理,用明胶包被的玻璃瓶刚接种时长得慢些,但一周以后长势也可以,我们这一般传代就用这种处理过的玻璃瓶,养的原代胶质细胞很好!
3.你那张图片上主要还是星形胶质细胞,不规则形、分支粗短的。形态小、折光性强的应该是小胶质。神经元基本没看到,成纤维细胞就不好说!
4.我们是接种后48小时用10μM阿糖胞苷抑制胶质生长,抑制48小时后更换新鲜培养基DMEM/F12。
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2541[使用道具]
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我觉得如果经费充足,当然最好用Poly-D-lysine。我们养神经元用的就是这种,但养原代胶质只要1%明胶即可。
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wanglaoshi[使用道具]
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多谢各位高手。
我再请教一下,用PLL或PDL被时,对于包被液的配制,加入量,时间等有什么特殊的要求吗?
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2541[使用道具]
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就用灭菌的去离子水配的,只要盖过的就行了,一般处理过夜。
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xingyi08[使用道具]
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如何消化,胶原酶可以吗?多少浓度?消化多长时间?离心的转速?能否说的具体些,多谢!
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milkdog[使用道具]
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一般而言,包被明胶的培养效果比PLL好,明胶使用浓度实际上不需要到1%,2.5-5mg/ml即可。据我们的经验,明胶溶于0.1MPBS,PH6-7,其中补充BSA1mg/ml包被效果最好,包被于4度过夜。然后用去离子水清洗。当然如果有条件可以使用NHS 和 EDC进行交联,这样的包被器材比较耐用,不易脱落,一周以上明胶脱落的也不多。在图片中似乎有个别成纤维细胞。培养是很成功的,星形、小胶质细胞的基本形态出来了。
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milkdog[使用道具]
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神经胶质细胞的间质成分不是特别丰富,而且容易在体外培养生长,因此使用常规的组织块法、胰酶消化法、胶原酶消化法均可。其贴壁速度慢,初期生长慢,常常混有成纤维细胞、内皮细胞、巨嗜细胞等,经数次传代后形成均一的单层生长的细胞,星形细胞活力好一些,占绝大部分。当然你要是有钱的话,可以去买roche公司的特制消化酶,专门用来分离神经组织细胞。
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