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标题:【讨论帖】western blot问题解答

bs4665[使用道具]
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我是新手
最近跟着师兄在做
上周一直都很顺利
这周同样的样本和试剂,只是二抗的量有微调.
不知道为什么就是没有结果,只有内参的条带能出来,另外的目的蛋白完全不显
请教大概会是什么原因呢?
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ero11[使用道具]
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您好,我想问您几个问题:
我做的是单核细胞株上的TLR4蛋白表达,分子量90KD,转膜用的是70V湿转2小时,10%牛奶封闭过夜,一抗1:500孵育3小时,二抗1:5000孵育1小时,然后洗膜发光,但是TLR4基本上没有显影,但是内参很浓很明显,之前也是这个条件做出来过,但是今天不知道为什么做不出来了,请求指导!谢谢您。
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wmp1234[使用道具]
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请教我的目的蛋白是59kd和38kd。我转膜势400mA,转膜60分钟,但是转过了头(我分别进行考马斯亮蓝和丽春红染色)。以前我们也是这样的条件,但是转膜恰好,这是什么原因呢?你看以上的目标蛋白改用多大的电流和时间呢?我的膜是NC膜,谢谢!
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楼主,您好!
我最近做western遇到一些问题向您请教下。抗体是cell signal的,第一次做的时候一抗按照1:2000稀释,二抗1:2000稀释,蛋白上样量15ug,没有杂出任何条带,考虑可能一抗浓度不够,第二次把一抗的浓度调整为1:1000,蛋白上样量30ug,因为是连续做的,所以接着用了前面的抗体,把浓度调整了一下,还是什么都没有杂出来,第三次考虑二抗的浓度过高消耗了ECL底物,把二抗浓度调整为1:4000,上样量40ug,还是什么都没出现,此外第二次actin出现了一次,第三次actin用的半个月以前配的杂出来了,新近配的没杂出来,请问楼主是什么原因呢?
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楼主好:我做130kd的蛋白,8%的胶。转膜液体10%甲醇,千分之一SDS。300ma 1个半小时。转膜完成后发现marker在膜上不明显 无法切膜。奇怪的是比较小的marker都能看到,反而是70多的红色marker非常模糊.请您分析一下是什么原因。
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fei1226com[使用道具]
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4度一年没问题
你调整一下后先染胶
把结果图放山来

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恩,谢谢老师,找到原因了,是电泳缓冲液的问题,重新配了一批,现在已经正常了。
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ritou1985[使用道具]
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楼主好,看了你众多的问题解答,觉得收益匪浅!感谢!
最近开始做WB,一个月前学习这门技术时只做内参蛋白GAPDH,条带每次都很好,正式开始做目的蛋白了,结果却没有很迷惘!我开始给自己找原因 :
1,因为粗心,电转液新配制时忘记加甲醇了,可是考马斯亮蓝染色证实蛋白都转到膜上了,是否没有加甲醇会对结果有很重要的影响??
2. 换了一瓶新的ECL显色液,想证实一下显色液是否有问题,我看论坛上提到在NC膜上点杂交的办法,实验室没有NC膜,请问PVDF膜可以用来检测二抗,及ECL显色液是否有问题??怎么检测,能否告知具体方法??非常感谢!!
3,同一瓶电转缓冲液储存液前后两次配制的电转液,一次电流达到350MA,一次电压达到100V,分别是按恒流及恒压电转的,所以很奇怪??电转仪器用的是BIO-RAD的装置!
楼主可否给予一定的建议和意见!
蛋白我认为是没有问题,冰上孵育我都很注意!考马斯亮蓝染色证实蛋白是存在的!可是结果不知怎么解释??希望楼主帮帮我!
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是新手
最近跟着师兄在做
上周一直都很顺利
这周同样的样本和试剂,只是二抗的量有微调.
不知道为什么就是没有结果,只有内参的条带能出来,另外的目的蛋白完全不显
请教大概会是什么原因呢?

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样品冻融了几次?
感觉是样品冻融
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您好,我想问您几个问题:
我做的是单核细胞株上的TLR4蛋白表达,分子量90KD,转膜用的是70V湿转2小时,10%牛奶封闭过夜,一抗1:500孵育3小时,二抗1:5000孵育1小时,然后洗膜发光,但是TLR4基本上没有显影,但是内参很浓很明显,之前也是这个条件做出来过,但是今天不知道为什么做不出来了,请求指导!谢谢您。

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是同样的样品吗?
考虑一下样品降解
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请教我的目的蛋白是59kd和38kd。我转膜势400mA,转膜60分钟,但是转过了头(我分别进行考马斯亮蓝和丽春红染色)。以前我们也是这样的条件,但是转膜恰好,这是什么原因呢?你看以上的目标蛋白改用多大的电流和时间呢?我的膜是NC膜,谢谢!

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300mA 60min就够了
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