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标题:【讨论帖】western blot问题解答

xingyi08[使用道具]
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B-ACTIN不齐一定是测蛋白浓度引起的吗?我今天做了一个5组的组织蛋白,1,2组ACTIN很粗,3,4,5较细但这三组比较齐,不知是什么原因,请帮我回答一下吧?谢谢!
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我目的蛋白大概40kD,内参为B-Tubulin 55kD,想在一张膜上把这两个蛋白抗体都结合上去,请问:我是应该先孵育一种抗体,洗涤,再孵育另一种抗体,洗涤,上二抗;还是把两种蛋白抗体混合在一起孵育,洗涤,再上二抗?两种抗体之间会不会互相影响?谢谢!

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如果你的分离效果好,最好是在40-55之间的位置把膜剪开,各做各的;
如果不好剪,那你就先做目标蛋白,目标蛋白出来后在做内参。
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我现在正在做一个非磷酸化蛋白的Wb,蛋白分子量是80KD,这个蛋白有磷酸化和非磷酸化两种状态,非磷酸化状态时在胞核,磷酸化时在胞浆,之前提的冰冻组织的总蛋白,裂解液用的是碧云天的,上样量加到了150微克,一抗稀释浓度为1比100都没怎么做出来,请问我这种情况需要提取核蛋白做吗?

有没有一些好的建议,提示一二,感激不尽啊

谢谢谢谢谢谢谢~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~
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我目的蛋白大概40kD,内参为B-Tubulin 55kD,想在一张膜上把这两个蛋白抗体都结合上去,请问:我是应该先孵育一种抗体,洗涤,再孵育另一种抗体,洗涤,上二抗;还是把两种蛋白抗体混合在一起孵育,洗涤,再上二抗?两种抗体之间会不会互相影响?谢谢!

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可以啊
第一:先杂交目的蛋白,加二抗、曝光、用缓冲液洗去ECL,加入内参一抗、二抗、曝光
第二:先杂交目的蛋白,加二抗、曝光,然后用stripping buffer洗去目的蛋白的一抗与二抗,然后封闭,杂交内参
good luck
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请教版主:

我现在正在做一个非磷酸化蛋白的Wb,蛋白分子量是80KD,这个蛋白有磷酸化和非磷酸化两种状态,非磷酸化状态时在胞核,磷酸化时在胞浆,之前提的冰冻组织的总蛋白,裂解液用的是碧云天的,上样量加到了150微克,一抗稀释浓度为1比100都没怎么做出来,请问我这种情况需要提取核蛋白做吗?

有没有一些好的建议,提示一二,感激不尽啊

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1,什么蛋白?抗体用的是什么厂家的?货号多少?不方便说可以pm我
2,提取的方法是什么?详细点说
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B-ACTIN不齐一定是测蛋白浓度引起的吗?我今天做了一个5组的组织蛋白,1,2组ACTIN很粗,3,4,5较细但这三组比较齐,不知是什么原因,请帮我回答一下吧?谢谢!

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测定蛋白浓度、调整蛋白浓度、上样、转膜、抗体孵育都会引起
你自己可以想一想
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如果你的分离效果好,最好是在40-55之间的位置把膜剪开,各做各的;
如果不好剪,那你就先做目标蛋白,目标蛋白出来后在做内参。

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我的做法是用大的电泳槽
分离胶在10cm左右
充分分离
剪开做
呵呵
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相关疾病:
阳萎心肌梗死
试验中又发现一些小问题,想请教一下。
1.现在天气热,27度空调房里,分离胶几分钟就凝了,减少APS和EDMET的量,20分钟左右凝好,积层胶30多分钟凝好。想问一般时间控制在多少好。我现在12%的胶上样后,积层胶还好,基本可成一条线,压线后进入分离胶就变得很散,跑到最后时,最下面溴酚蓝的带很宽,大约0.8cm,我以前跑胶时基本都很漂亮的一条线。请问这是什么造成的,会不会影响结果(个人感觉蛋白带被拉长拉细了),是不是胶凝得不好的缘故?
2.转膜,半干转,15V 45min,小点分子量的预览Mark已经转过到滤纸上了,但72KD的在胶上还可以看到残留,染胶有蛋白带残留,条带稍模糊,也很细。请教,我要不要改善转膜条件呢?是降低电压延长时间还是怎样呢?
谢谢
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taoshengyijiu[使用道具]
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相关疾病:
大动脉炎
另外,用santa cruz的一抗,1:150稀释,4°过夜,相应二抗室温1h,最后DAB染色,没看到目标蛋白带,也没有背景,完全白板,是什么原因呢?同样条件的内参有条带,但也不强。蛋白应该在膜上,转后用丽春红染过。上样的蛋白量也有100ug了。
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is2011[使用道具]
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想求问,蜡块能否进行western blot?效果会不会受很大影响?
蜡块是上一届师兄留下来的,大约是2-4月份做的,保存在-80度下
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