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标题:【讨论帖】western blot问题解答

youyou99[使用道具]
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1,你的目的蛋白提取的怎样?
2,你做的是什么蛋白?磷酸化还是非磷酸化?需要用不同的封闭体系
3,低丰度的蛋白建议采用更加敏感的检测系统(超敏ECL),具体的你可以再问

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1.我的目的蛋白是抽提的酵母蛋白,因为现在要验证双杂筛到的两个蛋白的互作,所以想利用双杂载体上的HA和c-myc两个tag来做酵母体内的Co-IP,现在先是拿了一个抗体来做酵母提取物中的目的蛋白的检测效果都不太理想。
抽提方法是酵母菌体,液氮研磨后直接加抽提Buffer(主要成分包括PIPES,EDTA,TRITON X-100,PMSF,和蛋白酶抑制剂),4度离心20min取上清。
蛋白丰度低是低了一些,但这种方法应该也是可行的啊,其他实验室有用的。

2.实际上我有一个蛋白是激酶,最后我要证明能它能磷酸化另一个蛋白的,但是现在主要是想做Co-IP,也没考虑过具体是磷酸化还是非磷酸化的。磷酸化与否影响它们相互作用的表位吗?

3.我目前用的是HRP显影,碧云天的底物,超敏ECL是怎样的?可否推荐一下。
谢谢
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您好!
请问:我每次转膜后,发现凝胶都缩小了,会影响估算蛋白的位置,凝胶变小是怎么回事呢?

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在转缓中加入20%甲醇
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我觉得可能不是这个原因,因为膜上还有非特异条带,都是分开的,很整齐,效果都很好。只有目的条带是连在一起的。
另外,同一抗体洗出两个条带,变化趋势一样的,分子量相差很远,这是怎么回事啊?我测的是p21蛋白,会是二聚体的条带吗?

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看厂家抗体说明书
还有就是文献上怎么说的
有时候不在目的分子量处是很正常的
你可以稀释抗体试试能不能把你说的所谓的非特异性条带减弱了
另外如果还是不行只能换抗体了(你可以参考《抗体技术实验指南》)
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上样前加5XBUFFER,然后95-100五分钟变性,完后能立即上样么?上完样能马上放到-80度么?

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变性后用离心机短暂离心,把挂壁的水蒸气甩到管中
之后上样
能放到-80度保存,但是我觉得-20度保存一、两个月没有问题
good luck
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在转缓中加入20%甲醇

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我是加了20%的甲醇的转移缓冲液!
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我是加了20%的甲醇的转移缓冲液!

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整个缓冲液体系你是怎么配置的?
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popo520[使用道具]
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整个缓冲液体系你是怎么配置的?

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1L:
苷酸酸:2.9g
tris :5.8g
sds :0.37g
200ml 甲醇。定容到1升

pvdf膜甲醇浸泡5分钟。然后放入转移缓冲液中平衡。
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1L:
苷酸酸:2.9g
tris :5.8g
sds :0.37g
200ml 甲醇。定容到1升

pvdf膜甲醇浸泡5分钟。然后放入转移缓冲液中平衡。

====================

这个配方是半干转的
胶变小了与甲醇有关
注意转膜时的降温没?
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youyou99[使用道具]
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老师您好,请问1.5mm的板子蛋白的上样量是多少微克呀?是蛋白的总量,不是样品的容量哦,谢谢老师!
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33号[使用道具]
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这个配方是半干转的
胶变小了与甲醇有关
注意转膜时的降温没?

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我是放在4度转膜的,原来是半干转的,能告诉我湿转的配方吗?谢谢!!!
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