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标题:【讨论帖】western blot问题解答

tangxin_80[使用道具]
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还有问题想要问您,如下:
我的蛋白浓度太高了,在20-30ug/ul,我们的样品蛋白用5X的loading buff 稀释(按样品:buffer=4:1)后煮变性。如果我们取上样量为100ug。上样的样品体积太少了。。。。。我请教了一些同学,他们说,可以再加2X或者3X的loading buffer补充上样体积。是否可以。。。。还有请问,如何将5X的loading buffer 稀释成2X或者3Xloading buffer。谢谢,期待您的回答。。。。
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tuuu2[使用道具]
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各位前辈,请帮忙指点一下:
我前几天做四株癌细胞一目标蛋白表达量的比较,每株细胞设两个重复,前两株细胞目标蛋白表达均较高,条带较直,后两株细胞不表达,接着我又优势B-action想看看是不是样的问题,结果B-action比较弯,有点像逗号,并且后两个样中各有一个样B-action 没有表达,请问是哪里出了问题呀?我该注意些什么?急!!!!
先谢谢你们了!
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2541[使用道具]
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请问如果我做组织蛋白 如果不是新鲜做 我的组织要怎么保存 可以保存在液氮 或者是﹣80°冰箱中吗??
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yonger[使用道具]
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相关疾病:
肝癌
NBA你好,非常感谢你的帮助,我做WB也有两个月了,近来跑电泳考染后发现15kD以下蛋白就没了,蛋白从肝癌细胞和肝癌组织中分别提取的,胶浓度是15%的,电泳55v30分钟,80v50分钟,麻烦你帮我分析一下。
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您好 附图是我做的细胞提取蛋白胶片 5%脱脂奶粉室温封闭1h,santa一抗1:1500,用脱脂奶粉稀释,二抗1:5000,用TBST稀释,ECl反应1min,出来背景很深,看不到条带;之前做过一个蛋白可以看见条带,但就是在条带周围也有这样的背景,麻烦帮我分析一下原因


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向版主求助!我W的条带总是很弥散,而且很浓,曾出现过反影。调低一抗浓度合适吗?之前怀疑是蛋白讲解,但是新抽的蛋白也是这样。但用同门的蛋白一样的电泳及转膜条件就是很漂亮的条带!蛋白的抽提方法一样的,而且我也亲自抽过同门的蛋白。我的蛋白是110k,在160的位置有修饰后的条带。弥散的条带的位置是对的。电泳:80V浓缩胶后110v分离,300ma恒流湿转2.5~3h。不知问题出在哪里?非常感谢!!!
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原来一直用这个样品做的 我是做好样品之后加lodding buffer煮沸变性后分装保存的 -20保存的 不过时间可能长了点 有一个多月了,

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不知道你这个蛋白是不是容易降解
换新样品试试
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NBA[使用道具]
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老师你好,请再帮我分析一下转膜后出现这种情况的原因 (做了好多次电泳,转膜后都出现这样的现像,请问这是什么原因呢?我觉得可能是做三明治的明胶海棉太老了,中间薄周围厚,有的地方都有了小洞,但别人也是用这些海棉做的,没有出现这种现像)转膜时电流300mA,时间2小时,目的蛋白80KD。

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感觉像是胶与膜之间有挪动
转移时温度太高
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is2011[使用道具]
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请问如何计算转膜电流和时间?
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版主你好,请教条带大小分别为41KD、60KD、85KD的蛋白用NC膜湿转时的条件?电流和时间等。还有什么要注意的问题?先谢谢了

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可以选择一个适中的时间把这三个蛋白都搞定
300mA湿转,1h20min
0.45um孔径NC膜
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