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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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您说的抗体稀释是一抗、二抗都要稀释么?我的一抗浓度现在用的是1:1000,四度孵育过夜;二抗1:3000,37度一小时。
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gemei0115[使用道具]
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降低一抗二抗浓度

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之前做一个蛋白条带出来了 但是也是背景有的地方很高 而且条带看上去也不是很明显的 如果我降低一抗二抗浓度的话 蛋白条带会不会更不明显呢
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版主你好,请您指教。
我们老板要我们测体液(血/尿)里面的目的蛋白,大概会按照国外文献的方法来检测(据报道脑脊液,尿液,泪液etc可以检得出来):先用差速离心(20万G)获得蛋白样品,据文献说此时得到是“目的蛋白-Containing Membrane Particle”,然后再去做WB,ECL。
以往没做过WB。
问题:1. WB检测的是蛋白质吧,那么这种离心后得到的“目的蛋白-Containing Membrane Particle”老外既然作出来结果了,它跟平时做的WB会不会不一样。文献上好像就是平时WB的方法。
2.血/尿中的目的蛋白估计会很少,如何除杂,提高目的蛋白的检出率,就是说血清蛋白和尿蛋白一般WB的方法是怎样的。
3.定量WB的方法。
非常感谢。

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这方面的WB没做过
WB是检测蛋白的
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请问: 做WB的内参显影后总是连在一起成一条线 是怎么回事??大概能看出各个孔的条带,但是连线太厉害了。。 后来我隔一个孔点样,内参倒是分开不连线了,但是边缘效应很明显,点在边上的样品,内参明显不如中间的亮 真不晓得怎么办了。。。。
特此请教,谢谢~~

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降低上样量
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感谢版主及时回复!我的胶都是4度过夜配好后第二天用的。此外帮同门W的基本都是漂亮的条带。希望你能帮我找找原因,不胜感激!

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转膜时降温
另外调整一下抗体稀释度
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您说的抗体稀释是一抗、二抗都要稀释么?我的一抗浓度现在用的是1:1000,四度孵育过夜;二抗1:3000,37度一小时。

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是的
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之前做一个蛋白条带出来了 但是也是背景有的地方很高 而且条带看上去也不是很明显的 如果我降低一抗二抗浓度的话 蛋白条带会不会更不明显呢

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在合适的稀释度时是不会的
现在摸索条件就是找一个合适的点
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我用的是伯乐半干转,转移缓冲液配方是:
甘氨酸(MW75.07) 2.9g
Tris(MW121.14) 5.8g
SDS 0.37g
蒸馏水至 1000ml
我做的蛋白是cPLA2-a,文献上分子量是85-114(好几个版本,具体不清楚是哪个),请问我的转膜条件:24V 50min可以吗,我做了3次,条带没怎么看到。
还有,背景很脏,我二抗浓度已经调整到1:10000了,背景还是脏,洗膜TBST,15min,3次。(另一个抗体一起洗膜的,背景就很干净)请问应该怎么调整。谢谢
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VEGF我做过细胞总蛋白的
没有阳性条带
HIF-1没有问题
有结果
用胞浆、胞核蛋白抽提试剂来分别提取胞浆、胞核蛋白
因为HIF-1会在胞浆与胞核中移动
做WB时胞浆、胞核蛋白都要检测

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您好!正如你上次所说HIF-1a没有问题,可是我们实验室一直就没做出过这个蛋白,恳请问您一下你们是用的什么细胞?常氧培养还是低氧、缺氧?WB操作过程中有没有特殊的要求(因为有人说HIF-1a很不稳定,遇氧分解,收蛋白,定标等都应避免与氧接触,可是我们觉得这个条件很难实现)?急盼你的答案,谢谢!

[ 本帖最后由 831226 于 2013-2-20 17:22 编辑 ]
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再次打扰你,前几天做了个斑点印迹,拍的照片好奇怪,请你帮我分析一下啊

[ 本帖最后由 66+77 于 2013-2-20 17:29 编辑 ]


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