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标题:【讨论帖】western blot问题解答

8princess8[使用道具]
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1,你做的是什么来源的?组织还是细胞
如果是组织分泌型的可以做,但是细胞的话就分泌到培养液中了
2,脱氧胆酸钠是破膜的,同时能提取膜蛋白
3,蛋白酶抑制剂是非常重要的!
4,能做出GAPDH只能说明WB后续步骤没有问题
并不能说明能把你的目的蛋白提取出来

================

用的是组织来源的。
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wood533[使用道具]
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请问老师 我做的是10KD的SDF-1a目的蛋白 做了1个多星期了目的蛋白一直未出条带。我们实验室用的是tris,甘氨酸-SDS-PAGE bio-rad 系统 湿转 请问老师该用什么条件?
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你好,我做WB有一个月了,跑出来的条带总是几个孔连成一条线,请教过一些实验室的师兄师姐,有说是胶做得不好,也有说是上样量太大,但是减少上样量并严格按照碧云天PAGE胶配制试剂盒说明重复试验后还是很难看。放上今天曝的图,麻烦你帮我分析一下:
1.泳道间没有分开的原因?如何改进?
2.为什么同样大小的蛋白,几个泳道间位置也不太一样,中间跑得比两边快?
3.几乎每次电泳都会出现图3的情况,样品从孔底部像两边溢出(并没有刺穿孔),如何解决?

我的条件是电泳浓缩胶80V,分离胶100V;转膜250mA,100min;上样量10-20ug;每孔体积25ul;胶凝固时间是各30min。谢谢!

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1,蛋白定量可能有问题
2,上样量减少一半
3,分离胶聚合时间1h30min
4,位置不一致是因为梳孔之间有高低
5,跑电泳时凝胶底部有气泡
6,浓缩胶是不是有破裂的情况
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请问一下,我想提取组织的蛋白。但标本数目不够,不能同时提取。需要加什么试剂吗?有同学说加蛋白酶抑制剂,但具体不知道怎么操作,不知道能不能指导一下,谢谢!

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-80或者液氮冻存
一块提取
另外蛋白酶抑制剂是在提取蛋白的时候加
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版主你好:
再请教您一个问题。我用的是湿式电转。转移buffer 配方是:0.1%SDS,20%甲醇,Tris,Glysine.目的蛋白是17KD。可以推荐一下您认为合适的转膜条件吗?

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我选择用湿转
300mA 15~20min
用0.22um膜
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老师您好,我按您的意见重新做了一下western,把一抗和二抗的浓度都下调了一下,但ECL显色后仍是出现如图1的结果;然后我又在相同的western条件下用DAB显色,得到了如图二的结果,貌似蛋白条带出现了,但不是很清楚,您分析一下,我的实验可能是哪出了问题,会不会是显色底物或抗体的问题,谢谢。

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抗体稀释度需要加大
ECL敏感性高于DAB
也就是ECL操作能节省抗体
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请问老师 我做的是10KD的SDF-1a目的蛋白 做了1个多星期了目的蛋白一直未出条带。我们实验室用的是tris,甘氨酸-SDS-PAGE bio-rad 系统 湿转 请问老师该用什么条件?

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用Tricine-SDS-PAGE试试吧
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用的是组织来源的。

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继续做啊
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1,蛋白定量可能有问题
2,上样量减少一半
3,分离胶聚合时间1h30min
4,位置不一致是因为梳孔之间有高低
5,跑电泳时凝胶底部有气泡
6,浓缩胶是不是有破裂的情况

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多谢指导!还想请问如何避免凝胶底部的气泡以及如何防止浓缩胶破裂?
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多谢指导!还想请问如何避免凝胶底部的气泡以及如何防止浓缩胶破裂?

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1,拔梳子时不能前后动,只能左右移动
2,胶底部的气泡要用灌胃针进行吹打
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