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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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我是早上现磨的心肌组织,共6组。下午测浓度,都很顺利。但是测完浓度样品加入Loading Buffer热变性后,有三组的样品变成了黄绿色,而其他三组还是正常的蓝色。

Loading buffer是好的,考虑是蛋白出问题。准备明天重新磨组织再看看。但是不知道是什么原因???还望各位指点。
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wood533[使用道具]
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有个问题请教楼主:

我按照你介绍选择二抗稀释倍数的方法

做了二抗点样NC膜之后DAB显色的试验

结果如图所示,请问我应该选择哪一个做为我二抗的稀释倍数呢

标示的数值对应的稀释倍数为

1、1:2500

2、1:4000

3、1:5000

4、1:6000

5、1:8000

6、1:10000

7、1:20000

请帮我看看方法对不对,并帮我选择一下合适的二抗稀释倍数

另外我对一抗的稀释度还不清楚,该怎么做呢?


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今天转膜发生了一件奇怪的事:
转膜条件和以前一样,半干转,20V,1h
转膜之前,胶上有Maker
转膜之后,胶上,膜上都没有Maker了,下层滤纸上也看不见。
具体有没有转上,要看明天的显影结果了。

这是怎么回事呢?
很是疑惑。。。
请教了,谢谢~
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请教高手一个问题,我们实验室的同学告诉我说如果第一次发光不理想,可以把膜洗洗,重新加上发光液,再次发光,(不是加抗体,只加发光液),并且他们说可以发出来,我试了一次,没有发出来,并且从理论上来讲,好像也是讲不通的,因为发光也不是和二抗反应吗?能把发光液洗掉吗?不知道有没有战友这样做过,多谢!!!!
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本人做了WB一段时间,只是现在想要数据处理了,我用的是ECL曝光之后,那X胶片就放着,扫描了一下,然后用quantity one软件处理,这样可以吗?
最近知道有人用凝胶成像系统,CCD照相,这个是在曝光的时候照的相还是最后将X胶片放进去用自带的软件进行数据处理?
谢了!
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请问楼主怎样可以曝出很干净的片子,除了封闭和抗体浓度外还要注意些什么?甲醇激活PVDF膜的时间长短对转膜效果会有很大影响吗?

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漂亮的片子得看整个系统
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你好,f想请教你个问题:我的目标蛋白一个是26kd的,一个是18kd的,用的内参是β-actin分子量是43kd的,这三种蛋白我一起湿转,100V,25min。结果43kd的和18kd的都转出来了,就是26kd的没转出来。转膜液是Tris,甘氨酸,水,和20%甲醇。膜是pvdf膜。应该不是贴膜的问题,因为膜的面积很大。请问你这事怎么回事啊,急啊!

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43K的都出来了26K可能没转出来
你用什么方法确定有没有转出来?
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各位前辈,请问我以前用过的脱脂奶粉,今年五月份就过期了,现在接着用对实验有没有影响?

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再买一包新的
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各位前辈,我半干转后发现滤纸之间有许多小泡,尤其是最低的滤纸和石墨之间,这样对转膜有什么影响吗?是不是我以前内参变形跟这个有关系呀?有没有什么办法可以改进一下?我每次都很认真的赶气泡了,还是有.

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气泡的问题你可以这样解决
加缓冲液,放滤纸,再加缓冲液,放膜.....每步都加上缓冲液进行
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我是早上现磨的心肌组织,共6组。下午测浓度,都很顺利。但是测完浓度样品加入Loading Buffer热变性后,有三组的样品变成了黄绿色,而其他三组还是正常的蓝色。

Loading buffer是好的,考虑是蛋白出问题。准备明天重新磨组织再看看。但是不知道是什么原因???还望各位指点。

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是不是变性时污染了
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