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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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SDS-PAGE之后,胶经过了考马斯亮蓝染色和甲醇脱色后,这块胶还能不能用于转膜后做WB?

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不能
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请问一下我的试验有何问题??谢谢
转膜用GE按玛西亚半湿转印仪,400mA 1h,能看到预染marker已转上,然后封闭过夜(封闭液为1%的BSA,用PBS配制),然后PBST漂洗三次,然后一抗孵育2h(抗体稀释液为用PBS配制的1%的BSA),用PBST漂洗三次,二抗孵育2h(抗体稀释液为用PBS配制的1%的BSA),PBST漂洗三次,然后漂洗三次,最后用NBT/BCIP显色,结果一片空白。。。

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1、先进行蛋白电泳后的染胶,看蛋白提取情况
2、你的检测方法敏感性不够
3、目的蛋白定位在那?
4、抗体问题
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请各位大虾分析分析一下我做的western 到底是什么原因?
我跑的是amyloid beta 42,分子量4kD,图中前面五个泳道是标准品,后面的是果蝇组织提取物,为什么全都聚集在上面了呢?同上样量有关吗?用的是16%的tricine胶。


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taoshengyijiu[使用道具]
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请问做WESTERN的凝胶配好之后放在四度过夜之后还能用吗?
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1、先进行蛋白电泳后的染胶,看蛋白提取情况
2、你的检测方法敏感性不够
3、目的蛋白定位在那?
4、抗体问题

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我做了两块胶,染了一块 另一块转膜,电泳跑的不错。抗体前面做了dot blot已经确定了稀释浓度,应该没问题,我的目的就是看看目的蛋白的特异性反应。另外,是不是我的半湿法转移的步骤有误?一般情况半湿法转62KD的蛋白要电压电流时间要什么
条件?
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lxh031[使用道具]
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还有,抗体稀释的时候用PBS稀释好呢还是用含有1%BSA的PBS稀释好呢?
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请各位大虾分析分析一下我做的western 到底是什么原因?
我跑的是amyloid beta 42,分子量4kD,图中前面五个泳道是标准品,后面的是果蝇组织提取物,为什么全都聚集在上面了呢?同上样量有关吗?用的是16%的tricine胶。

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这么小的还没做过
不知道如何回答
是电泳还没有跑出来吧
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请问做WESTERN的凝胶配好之后放在四度过夜之后还能用吗?

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可以的
4度过夜效果会更好
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我做了两块胶,染了一块 另一块转膜,电泳跑的不错。抗体前面做了dot blot已经确定了稀释浓度,应该没问题,我的目的就是看看目的蛋白的特异性反应。另外,是不是我的半湿法转移的步骤有误?一般情况半湿法转62KD的蛋白要电压电流时间要什么
条件?

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恒流,1.2mA每平方厘米膜面积
1h30min就ok了
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还有,抗体稀释的时候用PBS稀释好呢还是用含有1%BSA的PBS稀释好呢?

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我一般用5%奶粉PBST或者TBST来稀释
还有就是3%BSA-PBST或者TBST
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