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标题:【讨论帖】western blot问题解答

ladyhuahua[使用道具]
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版主,你好!可否帮我分析下western结果?

我做的是香蕉果实一个转录因子的western,大小26 kDa左右,上样30 ug,我们做过考染,条带比较清晰,抗体是委托公司通过原核表达,蛋白纯化和兔血清纯化得来的,二抗是promega的羊抗兔带AP标记。我们的转膜条件是100 毫安转6 h,封闭液是3%BSA+TBST,4度封闭过夜,一抗浓度1:2000,反应3 h,二抗使用浓度1:5000(采用TBST+0.5%BSA稀释),反应1 h。NBT和BCIP显色。我这个图片显色时间较长。得到的结果是杂带多,目的条带为图片箭头所示。是不是封闭不好还是一抗使用浓度高了?多谢了!

另外,我订购了一个进口的封闭液(不是BSA的),我是否还可以用采用TBST+0.5%BSA来稀释二抗?
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ladyhuahua[使用道具]
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我用的膜是Bio-Rad PVDF膜(0.2 um的)
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版主,你好!可否帮我分析下western结果?

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1、你的电泳跑的很好
2、转膜时间不需要这么长,以我的经验 300mA恒流,30min
3、从结果来看一抗浓度太高,需要继续稀释一抗,做一个梯度,稀释2、5、10倍
4、二抗可以直接用TBST稀释,RT孵育30~40min就行
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831226[使用道具]
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多谢版主的解答,这两天按照你提供的建议重新做一下。
另外,还有一个问题想问问你,我们订的一个进口封闭液到了,是GenWay公司的,我看其产品介绍它是Phosphate Buffered saline/fish gelatin配制的封闭液。我看了园子里的一些帖子,用AP标记,BCIP/NBT显色的最好不要用PBS Buffer的。我打算用Phosphate Buffered saline/fish gelatin来封闭,用它来稀释一抗,一抗反应后再用TBST洗3次,二抗用TBST稀释,反应 1 h,最后用BCIP/NBT显色。这样是否可以?是否我得改用PBS buffer,不用TBST buffer了,但这样又不能用BCIP/NBT来显色了。
麻烦版主了!
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多谢版主的解答,这两天按照你提供的建议重新做一下。
另外,还有一个问题想问问你,我们订的一个进口封闭液到了,是GenWay公司的,我看其产品介绍它是Phosphate Buffered saline/fish gelatin配制的封闭液。我看了园子里的一些帖子,用AP标记,BCIP/NBT显色的最好不要用PBS Buffer的。我打算用Phosphate Buffered saline/fish gelatin来封闭,用它来稀释一抗,一抗反应后再用TBST洗3次,二抗用TBST稀释,反应 1 h,最后用BCIP/NBT显色。这样是否可以?是否我得改用PBS buffer,不用TBST buffer了,但这样又不能用BCIP/NBT来显色了。
麻烦版主了!

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直接用TBST不就行了啊
你们那配置TBST
麻烦?
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orangecake[使用道具]
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呵呵,不是的,因为我这次订的封闭液Phosphate Buffered saline/fish gelatin,它已经用PBS buffer溶解了的。如果我用这个buffer来封闭,一抗用这个封闭液来稀释,接下来二抗用TBST稀释是否可以?对最后的显色是否有影响?
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yes4[使用道具]
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你好!我想问一下同一张膜重新孵育同一种抗体要怎么处理?也跟孵育另外一种抗体一样要先淬灭吗?
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请教大家几个问题:
1、我做的是人肿瘤细胞,钙网蛋白(calreticulin, CRT/CALR),刚开始用的是abcam的兔源多抗ab4,怎么都没有条带,投诉后换了同样是兔多抗的ab2904,条带出来了(单一且位置符合)。但是现在由于做co-IP,换了个其他实验室使用的很好的stressgen的鼠单抗,居然又没有出来(条件和他们实验室一样,甚至增加了3倍的浓度,延长孵育时间都没有),而且用的是同一张膜,先用的abcam的兔多抗,条带很强,但是由于和IgG重链没有分开,所以重新洗膜后再孵stressgen的鼠单抗,结果连阳性对照都没有出来,再用同一张膜重新孵育abcam的兔多抗,又出来了,这是什么原因呢?

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还是抗体的原因,换成1:1000,4度48小时,室温2小时,条带就出来了。
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2、接上面的问题,对于同一张膜,同一个蛋白使用不同的来源的抗体,条带应该在一个位置吗?

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3、再接上面的问题,我的IP目的蛋白是64KDa,IgG重链是50,我现在用的是12.5%的胶,120V跑上层,80V下层跑3小时,结果由于IgG太强,掩盖了目的蛋白的信息,本来想换鼠源性的抗体来回避这个问题的,但是由于那个鼠源性的抗体一直没有出来,那只有在兔源抗体上想办法了。我除了降低IP的抗体浓度以外(厂家只说可以做IP,但是没有推荐浓度,ICC的推荐浓度是1/300,我这次做IP用的是1/100),还想通过改变下层胶的浓度是电泳时间来再将64-50两个条带拉开一些,有没有什么建议啊?有说如果电泳时间过长会使条带弥散,最长可以跑多长时间?

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降低IP抗体浓度至1:300,换成8%的下层胶80V3小时,条带分开了。
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