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标题:【讨论帖】western blot问题解答

kswl870[使用道具]
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版主,又一次来请教你了。
根据前两次你的意见,今天重新做了一次,ECL显色后杂带很少,背景也不错,就是出来的两条带与预测的分子量差别较大,预测应该是在26 kDa左右出现条带,但实际出来的两条带分子量在10 kDa左右。具体见图片,转膜是100毫安,5h,室温封闭2 h,然后4度封闭过夜,一抗1比3000,反应3 h,二抗1比5000,反应2 h,ECL发光液孵育3min(是普利莱超敏发光液),压片 5 min。
恳请版主再帮忙分析下,这次出现的分子量大小不一致的原因是什么?难道是转膜过程中目的蛋白出现了降解?如果是这样,如何改进呢?
非常感谢版主!


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tianmei001[使用道具]
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你好,我想请问一下以下两个问题
1.内参怎么选择:我要测的是从SD大鼠分离的一种细胞的一个磷酸化蛋白的表达,不知道具体该买哪种内参?一定要做内参吗?
2.我的一抗写着 Applications: IHC:1:50-1:100,请问是什么意思,是使用时的稀释比例吗?
非常之感谢!急用!
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你好!我的胶片洗出来的时候都是片子中间黑色有的脱落,还有显影液黑色絮状的,还能不能用啊?谢谢啊
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avi317[使用道具]
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我的整个背景都很黑,想知道什么原因?
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你好,我补充一下,我要检测的是p38。
提蛋白问题:我孵育的是12孔板,是消化后在加裂解液裂解,还是裂解后用细胞刮刮下来呢?裂解液中是不是可以加PMSF和另一种磷酸化酶抑制剂?
多谢,敬请老师尽量早些回复我哦。
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我的实验有两个处理,每个处理有六个样品,请问做western blot的话,是否这12个样品都要在一张胶上同时做呢?一般western 每个处理做几个样品啊?
为什么看到的图片大多数一个处理只有一条带呢,这能说明问题吗?
还有一个问题,我的实验要检测3种蛋白的表达量有无差异,内参要做几次啊?
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现正在做WB,有一些问题难以解决,希望fangweibin119可以给我解疑释惑。我做的是小分子蛋白,分子量在37、21KD,用10%的胶跑,转膜是恒流280mA,1小时。但是在实验中发现每次转膜后,PVDF膜上Mark(师姐留下来的,德国公司)条带都不明显,蓝色条带几乎没有,红色的隐约可见,ECL发光可见目的蛋白条带影,只是条带表现为分组不明显,粗、黑或者呈圆点状不成线状,请老师指点一下,谢谢!
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现在有一个棘手的问题,我在做WB之前用酶标仪定了上样的总蛋白量,但做了ACTIN后却总不能达成一致.总是不一致.请问这估计是什么原因?有什么比较好的解决办法?谢谢,急盼解答

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1、用什么定量方法?
2、蛋白定量准确性如何
3、可以通过内参的WB结果,计算积分光密度(IOD),然后再调整总蛋白上样量
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版主,又一次来请教你了。
根据前两次你的意见,今天重新做了一次,ECL显色后杂带很少,背景也不错,就是出来的两条带与预测的分子量差别较大,预测应该是在26 kDa左右出现条带,但实际出来的两条带分子量在10 kDa左右。具体见图片,转膜是100毫安,5h,室温封闭2 h,然后4度封闭过夜,一抗1比3000,反应3 h,二抗1比5000,反应2 h,ECL发光液孵育3min(是普利莱超敏发光液),压片 5 min。
恳请版主再帮忙分析下,这次出现的分子量大小不一致的原因是什么?难道是转膜过程中目的蛋白出现了降解?如果是这样,如何改进呢?
非常感谢版主!

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1、分子量怎么不标上呢
2、你用的什么Marker?
3、不同的marker在不同的胶浓度里表现是不一样的
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你好,我想请问一下以下两个问题
1.内参怎么选择:我要测的是从SD大鼠分离的一种细胞的一个磷酸化蛋白的表达,不知道具体该买哪种内参?一定要做内参吗?
2.我的一抗写着 Applications: IHC:1:50-1:100,请问是什么意思,是使用时的稀释比例吗?
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1、内参肯定是要用的,而且最好能做非磷酸化蛋白
2、不知道你的分子量多少,如果是总蛋白的话可以参考用beta-tubulin 55K,beta-actin 43K,GAPDH 37K,选择与你分子量差异较大的内参
3、Applications: IHC:1:50-1:100 意思是免疫组化应用的稀释度是1:50-100
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