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标题:【讨论帖】western blot问题解答

abc816[使用道具]
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老师您好!
最近做WB遇到很多问题,想请老师帮忙解答:
我做小鼠小肠H2AX 17kd和Ku70+ku80,之前用10%的胶,觉得ku70和80的两条带距离太近,H2AX的带又很粗而且连成线,后来改用15%的胶做H2Ax,8%的胶做ku70+ku80。蛋白浓度4ug/ul,上样量8-12ul都试过。电泳60V 30min,100V 45min,转膜用半干转,18V 30min,转ku时也用过20V 45min。一抗都是abcam的,H2Ax 1:1000,ku 1:600(推荐1:300-1000),二抗1:1000,抗体都用1%BSA-TBST稀释。

我的问题是这样的:
1.用8%的胶后ku就没做出来,其他条件都没变,近两次H2Ax也没条带了,丽春红染是有带的,但70、80分子量处一直都不明显。抗体一般会重复用3-4次,可以前用过1个月还能出条带的,大约5cm2大小的膜敷1.5ml抗体。是重复用抗体的原因吗?可以用10%的胶做ku吗?
2.actin曝光出的条带都像方括号一样连在一起,而且中间泳道条带粗,两边细,因为目的蛋白条带也是两边泳道的细,以至于不能确定是真的连actin表达量都低了还是电泳的原因。这和电泳槽电压有关吗?而且开始跑时内槽会缓慢漏液,漏一段时间就停了,我需要中途暂停补加电泳液。条带连线我也怀疑过上样量的问题,但ku蛋白的条带很细,我怕上样少了ku的做不出来,如果不在同一块胶上跑又怕结果不可靠。
3.H2AX有的表达比actin强很多,条带连线,有的很弱,上样量怎么控制呢?
4.转膜条件可以吗?H2AX的膜7.5*3cm大小,ku的7.5*2cm,是不是这样的条件对于ku的效果不太好?
5.在浓缩胶中跑大概10min左右时就会有一些样的溴酚蓝从孔下边的角漏出来,漏到浓缩胶和分离胶的界限为止,速度很快,而且并不沿泳道往正下方漏,而是随意的方向,漏的孔和样也是随机的,但都漏过,随着样进入分离胶后,那些漏出来的溴酚蓝也跟着一起被压入分离胶了。因为目的蛋白是核蛋白,我用的是RIPA裂解液,每次提蛋白时都会有胶状的DNA,我已经尽可能少吸DNA了,但是不能完全避免。这些漏出来的会不会是DNA在作怪呢?浓缩胶我一般会凝3h的,应该能凝好啊
另外附上曝光的图片,第一张是actin的,第二张是ku的,最后是H2AX的,希望老师能帮忙解答!谢谢!


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abc816[使用道具]
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不好意思发错了,是这张


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yychen[使用道具]
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超声10S?
你提取的是细胞蛋白吗?
如果是的话我不建议你用超声

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不是细胞的,是脊髓的,我大概间断超声3次,每次超声处理10s,间隔5分钟左右进行下一次超声。
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wood533[使用道具]
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我最近在做P21(WAF1)蛋白,理论上大小应该是21kD,可是我的条带出现在34kD处,而且很特异,做了几次都是如此。请问这是什么原因呢?谢谢~~
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qqq111[使用道具]
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老师,您好!WB基本做完了,在用Quantity one分析泳道时,显示的信息是“intensity”而不是“Optical Density”,两个含义一样吗?应该怎样解决?请指教,谢谢!
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JK.jon[使用道具]
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请教NBA版主:我想跑9KD的蛋白做western用什么 样的胶比较好,普通的SDS-PAGE 行吗?还是要用专门跑小分子蛋白的胶?
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lixi559[使用道具]
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楼主你好,再一次麻烦你,我现在觉得我的方法有很大的程度上都是错误的。。。。
以下问题想咨询你一下~~
1.铺完分离胶之后用什么封边呢?我用的异丙醇,待胶凝了之后用滤纸把异丙醇吸干净,不洗,再铺浓缩胶。我想问一下不洗可以么?要不要把异丙醇用去离子水洗洗呢?
2.我做的蛋白有的是胞膜蛋白,有的是胞浆蛋白,裂解的时候需要注意什么呢?具体的操作步骤是怎么样的呢?
3.我做的蛋白分子量是21kd,转膜条件大概应该是什么呢?我用的是150mA,1h,是不是太大了呢?
4.洗脱一抗和二抗的时候是用TBST洗三次么?我看有的资料上写的是TBST洗两遍,第三遍用TBS洗,哪种是对的呢?
5.我用的是DAB显色法,NC膜,请问NC膜可以重复利用么?怎么用stripping洗掉呢?
先谢谢楼主了,我暂时能想到的就只有这些
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版主您好!请问如果分离胶的PH低于8.8会看到marker是怎样的呢?谢谢!
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zhenxin[使用道具]
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请教一下,用提取组织的细胞外基质中的蛋白用什么方法好?裂解液有什么特殊的吗?
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ending[使用道具]
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1,请问,90kD大小的蛋白,10%的胶,跑电泳时的电压可选择多少。分离胶合浓缩胶都用180V可不可以?
2,转膜的条件(湿转)?我用180MA3.5小时,最佳的条件是?
谢谢!
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