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标题:【讨论帖】western blot问题解答

loli[使用道具]
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老师,您好!
做western blot有段时间了,现在出现了一个让我非常疑惑的事情,就是我的目的条带非常好,上样40微克,但是内参actin却基本上没有,有的居然还有两条actin条带,我买的是进口的actin,之前做的是actin非常粗但是现在却做不出来,请老师给点建议!谢谢!


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老师,您好!
做western blot有段时间了,现在出现了一个让我非常疑惑的事情,就是我的目的条带非常好,上样40微克,但是内参actin却基本上没有,有的居然还有两条actin条带,我买的是进口的actin,之前做的是actin非常粗但是现在却做不出来,请老师给点建议!谢谢!

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如果操作没有问题
请考虑抗体
比如保存条件是不是符合厂家要求、能不能识别你的样品种属、冻融了多少次、污染等
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版主您好,我现在在做一种细胞外基质糖蛋白versican,买过两种抗体st和ab的,一个是380kd,一个是70kd,试过不同的条件,做的时间也不短了,但是一直没有很好的阳性,偶尔出的话也是很不清楚,一直做得都是组织提的蛋白。
做过360kd的KI67,很容易就转出来了。一直怀疑是抗体的问题,70kd的抗体在09年nature上的文章中用过,结果很好,您能不能给我提点建议呢?比如说在转膜和组织蛋白提取方面,其实我觉得可能这两个环节可能对我的制约很大,蛋白提取我一直都是用的超声破碎组织(4度 30J)。谢谢!

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蛋白提取我一半不用超声
你是匀浆后超声还是只做超声提蛋白?
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蛋白提取我一半不用超声
你是匀浆后超声还是只做超声提蛋白?

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我是取了肿瘤组织小块之后加裂解液,在裂解液里用小剪刀剪碎,而后再进行的超声破碎。因为我现在用的裂解液是RIPA,感觉裂解能力非常强(提细胞蛋白的话也需要进行超声,因为裂解后的液体都是粘稠的,应该是把核膜也裂解了核酸出来了吧!)。其实我也一直担心超声会不会把我的胞外基质蛋白降解了,搜了一些网上的方法看,大部分都没有用超声的。我提的蛋白做持家倒是没有什么问题,可能丰度太高吧!
最近重复做的WB,电泳用了4-7.5%的SDS-PAGE胶(380kd的蛋白),转膜液中含10%甲醇、0.1%SDS,300mA转了3h,一抗1:500,二抗1:3000,背景还可,就是条带是斑点状断续的。
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我是取了肿瘤组织小块之后加裂解液,在裂解液里用小剪刀剪碎,而后再进行的超声破碎。因为我现在用的裂解液是RIPA,感觉裂解能力非常强(提细胞蛋白的话也需要进行超声,因为裂解后的液体都是粘稠的,应该是把核膜也裂解了核酸出来了吧!)。其实我也一直担心超声会不会把我的胞外基质蛋白降解了,搜了一些网上的方法看,大部分都没有用超声的。我提的蛋白做持家倒是没有什么问题,可能丰度太高吧!
最近重复做的WB,电泳用了4-7.5%的SDS-PAGE胶(380kd的蛋白),转膜液中含10%甲醇、0.1%SDS,300mA转了3h,一抗1:500,二抗1:3000,背景还可,就是条带是斑点状断续的。

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称取组织重量后,在冰上把组织剪碎
加入裂解液用电动匀浆器等匀浆,干嘛用超声???
如果提取出来的粘稠,可以用DNase I或者超声短暂处理一下
380K蛋白可以用梯度胶做
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请问版主“灌好浓缩胶后1h拔除梳子,注意在拔除梳子时宜边加水边拔,以免有气泡进入梳孔使梳孔变形。拨出梳子后用ddH2O冲洗胶孔两遍以去除残胶,随后用0.1%的SDS封胶.”——0.1%的SDS封胶这是为什么?谢谢!
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请问版主“灌好浓缩胶后1h拔除梳子,注意在拔除梳子时宜边加水边拔,以免有气泡进入梳孔使梳孔变形。拨出梳子后用ddH2O冲洗胶孔两遍以去除残胶,随后用0.1%的SDS封胶.”——0.1%的SDS封胶这是为什么?谢谢!

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我没这么做过
也没碰到过这样做的
说的是第一次,不好意思啦
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utt0989[使用道具]
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称取组织重量后,在冰上把组织剪碎
加入裂解液用电动匀浆器等匀浆,干嘛用超声???
如果提取出来的粘稠,可以用DNase I或者超声短暂处理一下
380K蛋白可以用梯度胶做

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因为超声仪实验室就有,觉得方便就用了,我们这边好多人都用的超声,下次用匀浆试试!
组织量和裂解液的比例,您给提个建议吧!是不是裂解不完全也可以提蛋白,还是最好裂解澄清呢?
您所说的梯度胶是怎么个配法呢?
谢谢!
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因为超声仪实验室就有,觉得方便就用了,我们这边好多人都用的超声,下次用匀浆试试!
组织量和裂解液的比例,您给提个建议吧!是不是裂解不完全也可以提蛋白,还是最好裂解澄清呢?
您所说的梯度胶是怎么个配法呢?
谢谢!

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梯度胶的配置参考《蛋白质技术手册》,有详细说明
一般情况组织重量:裂解液体积=1;9,常用
裂解不完全当然可以提取蛋白,只不过蛋白提取的量会少,或者部分不同部位的细胞提取少
离心后才能澄清啊
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xingyi08[使用道具]
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老师好,我的WB:蛋白A 127kD,蛋白B 37kD,均为核蛋白,我用RIPA提取蛋白。配8%分离胶,上样量50ug,电泳70V,30分钟,之后110V,60分钟。PVDF预先甲醇浸泡30分钟,转膜250mA,120分钟,封闭3小时,剪膜分两块,各自一抗孵育4度15小时,二抗室温1小时,结果37kD的蛋白隐约有条带,127kD的一片空白。

我的问题:
RIPA提取核蛋白可以吗?
这两个蛋白能否在同一条件做,胶浓度?转膜等条件?上述的操作有无明显错误的?
还有我的蛋白marker在红色72kD与绿色10kD之间理论上应该有5条带,而实验只见3条,不知何故?实验新手,请前辈指点,不胜感激!
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