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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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请问高手,为什么有时候我做的western总是想“M”型的带呢,就像下面的图示。很奇怪一样的手法偶尔就有,但是大部分时间是没有的,请指教,谢谢!!

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检查过胶底部的气泡吗?
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gogo[使用道具]
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我有两个相差1kD的目的蛋白(假设为a,b),二抗均为抗羊,先杂a再杂b的话,b的条带很弱但是a的条带还很强,先杂b再杂a则a的条带会很弱,二抗会累积而且很难洗掉,我试着增加一抗浓度,降低二抗浓度,结果好一些但仍然不够理想。用洗膜液洗了之后,残留的抗体是没了但是蛋白好像也被洗掉了。请问版主如何解决。
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我有两个相差1kD的目的蛋白(假设为a,b),二抗均为抗羊,先杂a再杂b的话,b的条带很弱但是a的条带还很强,先杂b再杂a则a的条带会很弱,二抗会累积而且很难洗掉,我试着增加一抗浓度,降低二抗浓度,结果好一些但仍然不够理想。用洗膜液洗了之后,残留的抗体是没了但是蛋白好像也被洗掉了。请问版主如何解决。

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1、样品充足,跑两次胶
2、stripping buffer会洗掉一部分抗原,但是如果是等比例往下洗的话结果是可以接受的
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1、样品充足,跑两次胶
2、stripping buffer会洗掉一部分抗原,但是如果是等比例往下洗的话结果是可以接受的

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看样子只能重新跑胶了,我洗过两张膜,第二次时间减半了,结果蛋白还是没了,显影看不到带。
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kulee[使用道具]
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向您请教
做western用ECL发光,前两次曝光A条带信号很强,B条带信号偏弱,换第三张底片延长曝光时间,B条带消失了,A条带也变弱,重新洗膜后加重新加反应液,也看不到条带。为什么?如何处理?
谢谢!
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你好,
1.我的目的蛋白是110kd左右的,但是出来的条带是在170kd上面点(marker的最大指示条带是170kd,10%的胶),是什么情况?二聚体么,该怎么解决?

2.
根据待测蛋白状态确定电泳条件:
待测蛋白状态 ?? 凝胶条件 ??上样buffer ?? 电泳buffer
Reduced - Denatured ?? 还原,变性 ??含β-巯基乙醇或DTT,含SDS ?? 含SDS
Reduced - Native ?? 还原,不变性 ??含β-巯基乙醇或DTT,不含SDS ?? 不含SDS
Oxidized - Denatured ??不还原,变性 ??不含β-巯基乙醇或DTT,含SDS ?? 含SDS
Oxidized - Native ?? 不还原,不变性 ??不含β-巯基乙醇或DTT,不含SDS ?? 不含SDS

以上是我在一个资料上看到的,待测蛋白状态?这个是怎么查的? 和是上样buffer决定的么?
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尊敬的前辈:
您好!我是刚做WB的小白,我的目的蛋白是53kd,但曝光结果在目的蛋白(目的蛋白已曝出)上面还有一条较细的条带,请问前辈这里面有什么问题?(我的一抗说明书上的条带只有一条),非常感谢!
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看样子只能重新跑胶了,我洗过两张膜,第二次时间减半了,结果蛋白还是没了,显影看不到带。

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再stripping之前条带的第一目的蛋白条带如何呢?
stripping后的效果不至于像你这样的情况
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你好,
1.我的目的蛋白是110kd左右的,但是出来的条带是在170kd上面点(marker的最大指示条带是170kd,10%的胶),是什么情况?二聚体么,该怎么解决?

2.
根据待测蛋白状态确定电泳条件:
待测蛋白状态 ?? 凝胶条件 ??上样buffer ?? 电泳buffer
Reduced - Denatured ?? 还原,变性 ??含β-巯基乙醇或DTT,含SDS ?? 含SDS
Reduced - Native ?? 还原,不变性 ??含β-巯基乙醇或DTT,不含SDS ?? 不含SDS
Oxidized - Denatured ??不还原,变性 ??不含β-巯基乙醇或DTT,含SDS ?? 含SDS
Oxidized - Native ?? 不还原,不变性 ??不含β-巯基乙醇或DTT,不含SDS ?? 不含SDS

以上是我在一个资料上看到的,待测蛋白状态?这个是怎么查的? 和是上样buffer决定的么?

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1、不同胶浓度中,marker指示的位置会有所不同
2、ruduced含有b-ME或者DTT
Denatured含有SDS
反之则不含
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NBA[使用道具]
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尊敬的前辈:
您好!我是刚做WB的小白,我的目的蛋白是53kd,但曝光结果在目的蛋白(目的蛋白已曝出)上面还有一条较细的条带,请问前辈这里面有什么问题?(我的一抗说明书上的条带只有一条),非常感谢!

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稀释一下一抗
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