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标题:【讨论帖】western blot问题解答

windy+++[使用道具]
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楼主,接着想教你WB问题,我每次转膜都是转两张膜(在两个黑匣子里),用一个电转仪电转,每次照相都是一张膜显示,请问楼主这是什么原因那??
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windy+++[使用道具]
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还有个问题接着问哈楼主,上样的时候根据蛋白的浓度,计算上样体积从而使蛋白的量一致,我是这样做的,还有上样相同的体积,蛋白量不一样,然后根据浓度计算从而标准化,这两者那一种更好一点,楼主的经验是什么,谢谢!!
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qianqin1977[使用道具]
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亲爱的战友们:我现在遇到一个奇怪的事情,麻烦楼主与战友们给我一些启示。
我现在做一个分子量17的蛋白,曝光后的结果是背景一片漆黑,在目的条带处包括MARKER的目的条带处是亮的。就是说结果和本来预想的恰恰相反!!!而且目的条带的形状很好,扁椭圆形,不同标本还可见粗细的不同,这种粗细的差异和预想一致!
我有些崩溃了!
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qianqin1977[使用道具]
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接上,我的BETA曝的效果挺好的。同时电泳,同时转膜,同时曝光。
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您好!我最近打算做药物对肾脏疾病NF-KB信号通路的干预作用,想用Western Blot测定NF-KB p65活性。一些国外的文献NF-KB p65活性测定采用的是普通的抗体,也有文献采用的是磷酸化的抗体,所以很不理解。园子的朋友说p65活化后入核,所以测核内普通的NF-KB p65活性与测蛋白的p-NF-KB p65活性意义是一样的,我想知道是不是这样?我是不是可以这么理解:NF-KB的活性可以通过活化的p65来反映,而p65只有活化后才能进入核内。换句话说,也就是p65的磷酸化水平可以反映核内p65的水平。那么是不是全蛋白中磷酸化的p65水平跟核蛋白中总的p65水平相一致?那么是不是可以用p-p65抗体测全蛋白中磷酸化的p65来反应NF-KB活化程度,而不一定要用普通的p65抗体测定核蛋白中p65的量?是不是这样?另外,我如果只想看下药物对NF-KB有没有影响的话是不是只要看干预组与对照组全蛋白中NF-KBp65的水平,而没必要一定要测核蛋白或者磷酸化p65的水平?请您指点!!谢谢!!!
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楼主您好,我刚开始做wb,现在我遇到个问题就是我的目的蛋白是17,35KD的,内参是43KD,如果不洗的话,怎么在一块胶上同时检测,谢谢!
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老师你好!有几个问题。
1.我今天跑了个GADPH(内参)。一个正常样本和四个不同时间感染的鼠肝脏组织来源的蛋白样本,跑了五个泳道。显影出来仅有正常组出现GD条带,而且又细又浅,其余四组影子也没有,请问会是什么原因啊!
整个操作在冰上进行,应该不会是蛋白降解。转膜条件是350mA 150min,有没有问题啊?
转膜完后胶染色,无条带。
2.还想问一下,转膜用的滤纸一般多长时间换一次?
3.天气凉了以后,用5%脱脂牛奶进行蛋白封闭需不需要提高温度,增加封闭效率?
辛苦啦!
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ROSE李[使用道具]
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楼主您好,我刚开始做wb,现在我遇到个问题就是我的目的蛋白是17,35KD的,内参是43KD,如果不洗的话,怎么在一块胶上同时检测,谢谢!

你的意思是这三个蛋白在同一块膜上检测吧。
这三个蛋白的分子量离得不是很近17,35,43kd,我觉得,可以在电泳中加上预染marker,转膜后,或者在封闭后,将这三个蛋白按marker上所显示蛋白质的分子量,将其剪成三块膜,分别孵不同的一抗,剪得时候要看好,以免碰到这三个蛋白条带。仅供参考!
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最近想做western 对western还不是很了解 弱弱的问一下 如果用细胞做western是不是必须是活细胞啊?培养好后在冰箱冻存的细胞能不能做啊?谢谢

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冻存的细胞与组织都可以
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还有个问题接着问哈楼主,上样的时候根据蛋白的浓度,计算上样体积从而使蛋白的量一致,我是这样做的,还有上样相同的体积,蛋白量不一样,然后根据浓度计算从而标准化,这两者那一种更好一点,楼主的经验是什么,谢谢!!

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相同体积
相同的总蛋白量
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