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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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请问做western-blot时,目的蛋白是膜蛋白,内参也应该是膜上组成性表达的蛋白吧,应该选什么呢?谢谢啦!

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如果做总蛋白的话不需要专门选择膜上的内参
用常用的三种内参就可以
膜上内参有Flotillin
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bs4665[使用道具]
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有时候做WB在显色的时候会出现方格样的条带,如图
不是每次都出,没有预见性的,我们做一般都是两块一起做的,做几次都只有一块膜会出格方格,电泳转膜条件都是一样的.不知道怎么引起的,各位有没有出现过这种问题啊?
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NBA[使用道具]
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很简单
第一:电泳缓冲液污染(是不是反复使用了?)
第二:转缓应该新配
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u234[使用道具]
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我用的是BCIP/NBT碱性磷酸酯酶显色,内参用的GAPDH,最后用AlphaEaseFC分析,半定量分析的时候应该尽可能把蛋白条带圈进去(如图一)还是应该所选的范围内全部充满蛋白条带,两种方法所得结果不同,请楼主指点!
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kuohao17[使用道具]
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六一的电泳仪湿转,仪器说明书上说是80mA 两小时之内完成,转65kD的时候可以做出来,但是同样条件做130kD没有条带,转膜时间延长至3小时,还是没有条带,麻烦指导一下。不胜感激!
电流能否改成100mA或者更大?
时间三小时还是再长一些?
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dongdongqiang[使用道具]
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你好!我这有个结果想让你帮忙看一眼。
这个图上有野生型和重组型两种的细胞蛋白,一抗分别是针对GFP的多抗和针对m2 tag的多抗(这个是鸡多抗,故背景很多杂带),二抗是抗兔或抗鸡的。我的蛋白是融合的M2-EYFP,为什么图中都是三条带呢?请教过有个老师,他分析是isoform,你怎么认为?
谢谢先
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我用的是BCIP/NBT碱性磷酸酯酶显色,内参用的GAPDH,最后用AlphaEaseFC分析,半定量分析的时候应该尽可能把蛋白条带圈进去(如图一)还是应该所选的范围内全部充满蛋白条带(如图二),两种方法所得结果不同,请楼主指点!

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应该全部选中
我用的是ImageQuant TL
最好用IOD值
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NBA[使用道具]
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你好!我这有个结果想让你帮忙看一眼。
这个图上有野生型和重组型两种的细胞蛋白,一抗分别是针对GFP的多抗和针对m2 tag的多抗(这个是鸡多抗,故背景很多杂带),二抗是抗兔或抗鸡的。我的蛋白是融合的M2-EYFP,为什么图中都是三条带呢?请教过有个老师,他分析是isoform,你怎么认为?
谢谢先

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这几天我刚做了GFP的抗体检测与GFP标签蛋白裂解液的检测
我认为你请教的那个老师说的有道理
GFP有时会有小片段存在
另外一抗的稀释度调整下
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NBA[使用道具]
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六一的电泳仪湿转,仪器说明书上说是80mA 两小时之内完成,转65kD的时候可以做出来,但是同样条件做130kD没有条带,转膜时间延长至3小时,还是没有条带,麻烦指导一下。不胜感激!
电流能否改成100mA或者更大?
时间三小时还是再长一些?

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25mM tris
192mM glycine
20% methanol
0.1%SDS
配制完成后放置四度冰箱预冷
转膜时降温
130KD还是很好做的
300mA恒流 2h10min
祝你好运
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one[使用道具]
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TBST的PH值6.0是不是对抗体结合有影响?
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