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标题:【讨论帖】western blot问题解答

kuaizige[使用道具]
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版主好
请教问题:
提取的蛋白质浓度过高或者过低怎么办?一般采取什么浓缩或者稀释的方法吖?谢谢
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版主好
请教问题:
提取的蛋白质浓度过高或者过低怎么办?一般采取什么浓缩或者稀释的方法吖?谢谢

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这个真没试过
高的话可以用裂解液来调整
低的话就不知道怎么处理了
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3648755[使用道具]
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版主好:我最近做western半干转160mA40min转整张膜的时候效率还可以,基本都转过去了,转一半胶那么大的膜同样的条件发现转的效率不高,只能转上大概一半?请问是什么原因呢,谢谢
ps:我的就是biorad那样的小胶版,0.75mm,我的蛋白30Kd
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版主好:我最近做western半干转160mA40min转整张膜的时候效率还可以,基本都转过去了,转一半胶那么大的膜同样的条件发现转的效率不高,只能转上大概一半?请问是什么原因呢,谢谢
ps:我的就是biorad那样的小胶版,0.75mm,我的蛋白30Kd

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半干,恒流,1.2mA/平方厘米膜面积
30K转膜30min足够
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caihong[使用道具]
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楼主您好!

最近做WB用TMB显色
(这是我用的配方:
buffer:0.1M 柠檬酸+0.2M Na2HPO4 pH5.0-5.4
TMB:2mg/ml溶于无水乙醇或者DMSO
H2O2: 30%

工作液:0.5ml TMB+ 9.5ml buffer+ 1ul H2O2
),
约10min后,目标条带出现黄色.不是出现蓝色吗?然后我用水漂洗结果条带消失。再显色就出不来了,请问原因是什么?
HRP最为灵敏的显色液是什么?哪个公司的比较好?
我的蛋白是70K左右,湿转条件你推荐是多少V多少时间?
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ending[使用道具]
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楼主你好!
我最近做wb一直跑不出目的条带,请您指点。
我的条件:
1.从细胞提取的蛋白质
2.目的蛋白分子量是33kD
3.电泳条件为:80v→100v
4.转膜条件为:250mA,1h
5.封闭用的5%脱脂牛奶,1h
6.一抗用的Bioscience的多抗,浓度为1:500(说明书推荐为1:500-1:1000)
4度孵育过夜
7.二抗孵育1h,浓度为1:5000(说明书推荐为1:5000-1:10000)
现象:
1.用我自己的样本可以跑出内参条带(内参用的GAPDH)但跑不出目的条带
2.用同学转好的膜(同学从组织提取做的其他蛋白,)孵育我的一抗,可以跑出目的条带。
请问我的问题出在哪里?
谢谢!
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您好!我最近配胶老是出现问题,一个是浓缩胶浓缩的比较厉害,经常是一个泳道都缩没有了,其次是一旦进入分离胶,marker就往边上歪(浓缩胶里是很正常的),这是我配胶问题?
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XYZQ[使用道具]
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您好!我最近在提蛋白做Western blot,我是用碧云天裂解液裂解肿瘤组织(-80°放置一个月吧),然后再加入PMSF,冰上研磨10分钟,倒入EP管中,超声波振荡15s,13000rpm,4°离心15min,然后就发现EP管上面有白色的东西,非常粘稠,请问一下这个是蛋白吗?
再次,上样的体积是20ul,电泳完之后采用考马斯亮蓝染色。染出结果很差,每次条带都很细,基本看不到,即使我把体积加大,也还是没有什么变化啊,这个是什么原因呢?还请版主解决我的困惑,非常感谢。
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831226[使用道具]
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第一个“不高兴和没头脑”的战友:你的条带很像我做过的一次,最后原因是,用PVDF膜,转膜前没有在甲醇液里浸泡,这对转膜,加一、二都有影响
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831226[使用道具]
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一般用专用的提取蛋白试剂,提出的蛋白浓度不会高或低的太多,若是这样,可以用双蒸水稀释一下
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