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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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版主,那能问下你做 iNOS的一抗除了SANTA的,还有什么公司的比较好,或者国产的也行,能麻烦推荐下吗?谢谢!

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用了Abcam的,还不错
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楼主,你好,最近我开始做WB,加ECL基本上看不到荧光,可是再加TMB却可以看到明显条带。问题会是在什么地方?我直接在ECL里加了二抗可见荧光,ECL是没问题的。PVDF膜在二抗孵育玩用PBST洗膜后,我又用水漂洗了一下,会是因为这个吗?ECL显色受膜上离子强度和PH影响大吗?

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在加ECL前的最后一个遍,不能用水
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您好!我现在决定换抗体了,参考文献用的是Santa Cruz,但是目前该抗体的反响不好,我选用abcam的,这样不知道好不好?你能给个建议吗?还有,同是abcam的同个指标,但是有山羊、小鼠,兔来源的,我该如何选择?谢谢!

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什么指标呢?样品的种属是什么?
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目的蛋白:17KDa 内参:37KDa
跑胶电压:上层胶70V,分离胶90V;转膜:250mA,目的时间25分钟,内参时间35分钟。
用的是0.2um的膜
一抗:1:2000 4度过夜(未摇);二抗:1:2000常温1小时,均是ABCam的
内参:1:2000 碧云天的
ECL plus+显色
显色后是整片空白,什么都没有;然后进行染胶和染膜发现在17和37的位置都是有蛋白的,不知道是什么问题,故请教高手们,给点建议!!!???

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转膜后染色了吗?
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请问版主如何根据目的蛋白分子量大小来调整转膜的条件。

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这个不是一两句能说清楚的

需要积累
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您好,我刚开始做WB,我要做的是食管癌细胞叶酸受体的表达,一种膜蛋白,38KD,用的抗体是Enzo公司旗下Alexis的一抗,给的浓度,是1:1000-1:100,二抗是进口分装的,做了一次actin,用的70v,100v电泳,300mA,60min电转,条带有出来,背景不是很高。那我在做目的蛋白的时候您可以给些什么建议吗?该怎么入手把条件给摸好呢,刚开始做,很多不懂,希望不吝赐教,谢谢!

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转膜后丽春红把膜染色
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版主,您好!上一次问您关于Ⅰ型前胶原蛋白的问题,您说“需要注意抗体识别的是还原型的还是非还原型的胶原蛋白”,我现在不太清楚“还原型的和非还原型的胶原蛋白”是指什么意思,有什么区别?我买了Santa Cruz,关于Ⅰ型前胶原蛋白的一抗,看了说明书,给出的图,好像是有两个条带。胶原方面,我刚刚才开始学习,不懂的东西比较多,麻烦版主了,谢谢!

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一般没有说明的情况下WB是还原型的
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我用的也是六一的电泳仪,我要的是Actin43KD和80多KD的目的蛋白,用60mA稳流跑能把Marker都跑开,然后用90V湿转90min,看胶上的Marker都已经转到PVDF膜上,但是用丽春红染膜,却看不到蛋白条带,望能予以指教。谢谢

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先做SDS-PAGE后的考马斯亮蓝染色
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版主您好,我最近作western遇到一个奇怪的问题,我做western已经半年了,这次是新提的动物蛋白,肾脏的,拿来做内参和目的,内参杂带非常的多,我是用脱脂牛奶封闭了2小时,一抗是1:1000,4°过夜,但是显影五分钟整个胶片像是把膜的大小框也显示了出来,而且非常黑非常乱,但是条带看的还是比较清楚。这是内参,不知道什么问题,是不是一抗不行了?

还有目的是做的LC3B,分子量很小,才14左右,我提的细胞蛋白试了几次都没做出来,都是一片白板,转膜时间是200电流,恒流,60分钟,0.45的PVDF膜。这次换用新提的动物肾脏蛋白做的,条件也换了,用了0.22的PVDF膜,恒流200的电流,50分钟,一抗是CST的1:1000,特别改用BSA封闭,抗体稀释液也都是换成BSA了,显影的时候居然出来了,但是是一团团的浓墨状的黑影,非常晕,不知道到底哪里出了问题,应该怎么改正,谢谢!!

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LC3B不太好做,CST的这个抗体我用过,效果一般

转膜时间缩短下,30min

内参出现杂带,以前出现过吗?
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刚刚接触wb,什么都是现学的

有人推荐我用image j来分析荧光图

我对着英文的说明书看了半天也不确定

image j是不是提供两个方法

1、在ps平台测出图像的mean和Pixels,然后再到image j里面进一步操作area,mean还有intden

2、直接image J里面操作,最后得到的是area和percent

如果是这样的话,那得到的这两类数据又该如何进一步分析呢

多谢前辈赐教
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