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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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4001
 
老师你好,我显色的时候,一下就出来了,
但是压片盒里面压片的时候就突然没了,
是怎么回事?
用的碧云天的ECLplus

另外曝光的时候底片容易变深,是什么回事啊?
显影液定影液用哪家的好

压片盒那个白色的屏用什么洗?无水乙醇

谢谢

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1、这种情况一般是二抗浓度太高,稀释二抗试试

2、容易变深是因为胶片走光。显影、定影用国产的就没问题

3、白色瓶用水,湿纱布擦擦就行
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NBA[使用道具]
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4002
 
谢谢NBA老师。我一直也用总蛋白做的,但是文献上都是先提取线粒体,再提线粒体蛋白来做。考虑到我的样本是收集的人体细胞,没有经过培养,数量相对少,所以一直提取总蛋白进行做的。可是结果总是不理想。

指标:ucp2(32kd),内参:actin.具体步骤:

1.制胶:4%浓缩胶,10%分离胶。上样量是50ug,30ul(1.5mm板);

2.电泳:70V,120V;

3.转膜:转膜液:20%甲醇(不加SDS)300ma转膜45分钟(伯乐电泳仪)(转膜后maker均胶清晰。立春红染膜后,在相应的位置有条带,考马斯蓝染转膜后的胶,见少许条带残留。);

4.5%牛奶封闭2小时室温,TBST洗15*3min;

5.一抗ucp2 santa cruz 山羊抗人(C-20)1:200 (建议稀释1:100-1:1000,条带在35kd),4度摇床过夜,次日约孵育18-20小时,TBST洗,15*3min;

6.二抗 中杉 兔抗羊1:1000(建议是1:1000-1:10000)室温1h,TBST洗15*3min,

7.piere超强ECL发光曝光5s,机器曝光。

结果:内参较清晰,没有背景。目的:在35kd上下各有一条,相距较近。
方老师:帮我看看有哪里可以改进的,谢谢!盼早日回复!

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1、UCP2可能在细胞中表达较弱

2、有图片吗?
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NBA[使用道具]
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老师:您好。我做的是人正常肝细胞LO2的bax和bcl-2。上样量是10微升,蛋白量为30.后来改为50,80.100,但是总是β-action出来,而目标蛋白出不来。抗体是sunta的,电泳仪和电转仪都是bio-rad,电泳条件是100v,1h30min(12%的胶),湿转,100v,45min(30min也试过)。5%脱脂奶粉封闭1h,一抗(鼠抗)过夜1:200-1000都试过,二抗(抗鼠抗)1:5000.碧云天ECL显色液,次次都是β-action出来,而目标蛋白死也出不来。原先以为是抗体不好,但是做小鼠的组织蛋白,就可以。

一直不知道问题出在什么地方,请老师指教!

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这几个抗体能识别人的吗?
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4004
 
这几个抗体能识别人的吗?

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说明书上说可以识别人、小鼠和大鼠的蛋白
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nn255[使用道具]
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您好,问个比较基础的问题,我们得到的westernblot结果是 目的蛋白灰度值比内参灰度值,然后用这个结果进行t检验吗?
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49888[使用道具]
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你好,这是我跑的小鼠血清白蛋白的WB,上样量是1:20稀释的血清10微升,一抗(abcam)1:5000稀释,二抗(中杉)1:3000,用bio-rad的机器曝的光,但是跑出来的结果不好,麻烦您给指导一下,非常感谢!
bbcodeurl('file:///C:/Users/ADMINI~1/AppData/Local/Temp/msohtml1/01/clip_image001.jpg', '%s')
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wmp1234[使用道具]
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如果我的目的蛋白分子量比较接近,我想通过重复染膜来检测这几个指标,我应该咋处理已染过的膜呢?都需要注意些什么?

谢谢!
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kswl870[使用道具]
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老师您好

最近在做LC3蛋白,条带都能出来,但是背景很脏,不知道怎么处理。。。。。
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我想比较肺癌组织培养液上清与正常肺组织培养液上清中的3种蛋白质含量,如何选择内参,查文献发现这些上清中不存在β-actin,β-tubulin等常用的内参,但看到有人提到可引入外源性的参照物,好像就是将一定量的β-actin或β-tubulin加入到一定体积的上清中,再进行western,由于加入的β-actin或β-tubulin是已知的,因此,也可作为参照来比较上清中多种蛋白质的含量。
请问楼主这样行得通吗?还有没有其它的办法比较?

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比较上清液中蛋白的变化可以用ELISA啊,买相关试剂盒就行,比WB好做
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vivian4123[使用道具]
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4010
 
调整一下一抗的稀释度

不行可以投诉抗体

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谢谢楼主 我换了一家公司的抗体 出结果了 还不错,
应该就是抗体的事了。
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