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标题:【讨论帖】western blot问题解答

owanaka[使用道具]
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老师你好,我做的是15KDa的蛋白,开始还有条带,但后来换了个实验室就经常空白,有也很不清楚。实在是不知道什么原因,胶也染过,膜也染过,感觉都没什么大问题啊。

我用的是bio-rad的半干转仪,条件是12v,60ma,30min。上下十层滤纸。NC膜。每个大小约8cm2。我知道这个跟您说的条件有不同,但是我以前用这个条件也是出条带的,而且很清晰。maker也转的非常清楚啊。

难道是我的NC膜有问题?或者是我的蛋白样品出了问题?

还有就是,我的内参也出来的,就是比较淡,所以才考虑是不是蛋白样品量的问题,但是按照计算,我每个孔加样的总蛋白早超过50ug了,是不是因为经常冻融和使用,样品出问题?
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PINK[使用道具]
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我现在在做I型胶原和III型胶原的wb,一抗是abcam的,上清和细胞的都做了,但是总是出不来条带,。用的是韧带细胞ACL和mcl,总蛋白都达到200mg了,请各位帮帮忙分析一下原因。同条件下另一蛋白250KD的都出来了
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4043
 
在做配制做胞浆、胞核抽提试剂的时候分离过。提取的是胞核组分做的,PARP-1效果一般

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如果提取蛋白时,胞浆和胞核蛋白不分开提,可以吗?即最终的蛋白提取液里,既有核蛋白,也有胞浆蛋白,这样的提取方法你用过没有?
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S6044[使用道具]
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请问120kd的蛋白,转膜条件是什么?
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youyou99[使用道具]
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我现在在做I型胶原和III型胶原的wb,一抗是abcam的,上清和细胞的都做了,但是总是出不来条带,。用的是韧带细胞ACL和mcl,总蛋白都达到200mg了,请各位帮帮忙分析一下原因。同条件下另一蛋白250KD的都出来了

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有可能这个是低表达的蛋白,或者根本没有表达这个蛋白。尝试阳性标本检查是否为抗体原因
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youyou99[使用道具]
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我现在在做I型胶原和III型胶原的wb,一抗是abcam的,上清和细胞的都做了,但是总是出不来条带,。用的是韧带细胞ACL和mcl,总蛋白都达到200mg了,请各位帮帮忙分析一下原因。同条件下另一蛋白250KD的都出来了
有可能这个是低表达的蛋白,或者根本没有表达这个蛋白。尝试阳性标本检查是否为抗体原因

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这几种细胞都是阳性标本,都含有大量的胶原。
但不知为什吗就是做不出来130KD和300KD的条带。
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jrwyyplt[使用道具]
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4047
 
10%的脱脂奶粉不会有什么问题
我怀疑你重复使用一抗

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请问楼主,是不是不可以重复使用一抗?还有就是:我现在正在做一个膜蛋白的WB,分子量是120KD,表达量比较低,提的是总蛋白,转膜条件:湿转:250mA,2.5h,有时候用200mA,3h,也试过半干转:100mA,40-50min,可是一直没出条带,或者有疑似条带出现,每次actin都有,每次都是以失败告终,请楼主给点建议。
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nn255[使用道具]
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有一个的问题请老师答疑一下:
如何确保内参一致?
我的样品提取后用考马斯亮蓝蛋白定量,然后调浓度一致,但是上样跑内参结果条带灰度值却不一致,肉眼看差异都很明显。蛋白定量还有意义吗?
但是根据这次的结果灰度值调节一下上样量,再跑内参,还是不太一致。所以到底该如何确保内参一致?
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xueyouzhang[使用道具]
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相关疾病:
肝癌
楼主您好:我一直在做肝癌细胞的雌激素受体、磷酸化雌激素受体、MMP9、NF-KB,很不稳定,做出过一两次,而且条带很浅。但是b-actin做的蛮好的。
我的wb条件:
细胞制备
配胶、电泳
转膜:转膜我没完全按照园子里说的那种三明治做法,我是金字塔形的做法,怕不仪器弄短路了。17v,20-30min。
5%牛奶封闭1小时
一抗4度过夜(bioworld,稀释液用的是碧云天的成品)
TBST洗涤10min*3次
二抗室温1小时
TBST洗涤10min*3次
ECL显色1-2分钟
结果是背景很浅,就再没什么其他的了?我也是个新手,也是一个人做实验,没有人指导,我尝试改变过抗体稀释度,封闭时间,ECL时间,增加上样量,就是没有效果。谢谢您给一些指导和意见!
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楼主您好:我在做肝癌细胞WB,其中一种蛋白结果很奇怪。 目的蛋白31kDa左右
我的wb条件:
新鲜抽提的蛋白
新鲜配制的胶12%和电泳液
湿法转膜220mA,40min。
5%牛奶封闭1小时
一抗4度过夜(sigma 1:500,太高,后又用过1:1000,还是老问题,稀释液用的是封闭液)
PBST洗涤10min*3次
二抗室温1.5小时 (稀释液用的牛奶)
PBST洗涤10min*3次
ECL显色10s
结果如图。这个问题并非每次都出现,使用同样的抗体和样品,条件也不变,有时出现,有时正常,请楼主看看,万分感谢


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