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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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胶上也没有,滤纸上也没有。请问这是什么原因啊老师?我们用的是伯乐的系统,转膜的时候就在转膜槽中加冰块,温度会不会对这个有影响啊?

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电极放反了吧
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您好,我是新手,想请教几个问题:

我的目的蛋白石28kD的,用多少浓度的分离胶合适,还有因为是细胞提取的蛋白,蛋白量比较少,电泳时需要的蛋白浓度多少为宜,一般0.75mm,10孔上样多少ul,15孔的呢?
谢谢

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12%分离胶
10孔上样量15-20ul左右
15孔上样量10-15ul左右
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老师你好,我最近连续做两次western,转膜的时候都没有转上,考马斯亮蓝染凝胶及丽春红染膜都没见到蛋白,PVDF膜也没见到有marker,转膜条件100V 90min。以为是电泳液转膜液的问题,后来重新配了液体,还是同样的问题,不知道什么原因。我的目的蛋白是大分子(250-300),看文献说如果是PVDF膜降低甲醇浓度或者不加甲醇及转膜液中加入SDS至终浓度0.1%更易促进大分子转出。转膜液中第一次没有加甲醇,第二次10%,不知是不是这个原因,请老师指教。谢谢!

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250-300KD的蛋白,我们经常做
用300mA 恒流,湿转,2h30min左右,效果不错
甲醇:20%
SDS:0.01%
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老师,电极没有放反哎。今天换了新的marker,130和170的marker条带看不见,是因为没转过去吗?我是85V,转2h
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谢谢老师指点。请问一下你们经常跑的250-300KD的蛋白分离胶及浓缩胶分别用多少的?今天又做了一下,还是没转上,marker只有很淡的影,丽春红染色未见蛋白,郁闷中,今天用甲醇10%,SDS 0.05%,100V 90min,电流在300mA左右。。真不知道该从哪里找原因了。
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pengke1983[使用道具]
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您好,我是一名在读硕士,想请教您一个问题。我最近在做western blot的时候总在膜的左侧60KD到25KD的一块区域转膜不过去,换了电转槽也不行,我已确定转膜的时候没有气泡,孵育抗体的时候也是均匀的,而且marker也转过去了,已经连续出现这样的问题了,麻烦您帮我分析一下可能的原因,谢谢!~PS:实验室里其他人没有碰到我这样的问题,之前我转膜都是没有问题的
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老师,电极没有放反哎。今天换了新的marker,130和170的marker条带看不见,是因为没转过去吗?我是85V,转2h

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湿转?
如果是湿转85V,2h转膜的话是没有问题的,130、170都能在膜上看见
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谢谢老师指点。请问一下你们经常跑的250-300KD的蛋白分离胶及浓缩胶分别用多少的?今天又做了一下,还是没转上,marker只有很淡的影,丽春红染色未见蛋白,郁闷中,今天用甲醇10%,SDS 0.05%,100V 90min,电流在300mA左右。。真不知道该从哪里找原因了。

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在这个范围的蛋白已经比较少,丽春红染色未见蛋白不一定就说没有蛋白转上
100V转膜3h后,做预实验试试吧
你是整张膜转得嘛?
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楼主,我想问一下蛋白上样量一致是指体积一致还是质量一致啊?样品蛋白浓度不同如何计算使其上样量一致?
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kswl870[使用道具]
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前辈,您好,这是我今天显影出来的一张片子,看起来真的让人死的心都有了。我隔了大半年都没有做WB了,今天是重新第一次做,所以想请您帮我分析分析可能的原因,我的实验条件如下:
1,上样组成:2XSDS上样缓冲液20微升,蛋白16微升,DTT4微升,但是我有的泳道上的总体积多,有的上的总体积少;
2,电泳时电压为40-80伏;
3,转膜条件,湿转,四张小膜用了两个转膜仪,所以用800MA的电流,前面三张大小在40KD左右所以时间为一个半小时,后一张膜100KD所以时间为三个小时;这里想请问一下,在一个电泳仪中两个转膜仪一起转的话,要不要把电流加倍啊,您平时用的多少毫安的电流转膜?
4,封闭用的5%的脱脂牛奶,4-8度过夜;
5,一抗放在室外10度左右,三个小时,然后再30度半个小时;
6,洗膜PH8.3左右的TBST,5*8次;
7,二抗1:4000一个小时,10度左右;
8,洗膜PH8.3左右的TBST,5*8次;这里还想问一下这个TBST的PH有没有什么影响,多少比较好?
9,曝光时加底物后,荧光很强,感觉整张膜都亮
麻烦您了,万分感激!
我自己分析感觉是蛋白降解了,因为抗体是别人用的,没有问题的,


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2013-3-21 11:38
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