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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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老师您好,看了您给别人的解答获益良深,我最近遇到一个问题,就是我配的8%的胶跑出来就像是10%的胶,另外我电泳的时候,溴酚蓝经常晕开很宽的样子,而不是以前很细的一条,配胶的东西都试过了没问题。请问还可能是什么问题。急求!!!!

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检查配胶缓冲液的pH
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hyuu[使用道具]
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楼主您好,刚刚接触WB,请教一个比较初级的问题,上样的时候要求样品同体积,那么marker呢,是否也要同样体积?比如说我上样量40ul,marker10ul,是否还需要用PSMF补充到40ul呢,还是就用10ul。如果体积与样品不同是否会影响预染marker的条带?先谢过
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楼主您好,刚刚接触WB,请教一个比较初级的问题,上样的时候要求样品同体积,那么marker呢,是否也要同样体积?比如说我上样量40ul,marker10ul,是否还需要用PSMF补充到40ul呢,还是就用10ul。如果体积与样品不同是否会影响预染marker的条带?先谢过

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marker一般不用等体积上
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tangxin_80[使用道具]
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老师您好!我最近在摸索CASP3这个蛋白WB的条件。不知道多大浓度的分离胶比较合适呢?我用13%和13.5%的分离胶做出来条带都是连成一条线的,电泳条件是恒流9mA,1h,这是否与浓缩胶高度有关?我们的浓缩胶1.7cm.
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老师您好!我最近在摸索CASP3这个蛋白WB的条件。不知道多大浓度的分离胶比较合适呢?我用13%和13.5%的分离胶做出来条带都是连成一条线的,电泳条件是恒流9mA,1h,这是否与浓缩胶高度有关?我们的浓缩胶1.7cm.

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蛋白上样量多少?
应该是上样量太大的问题
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蛋白上样量多少?
应该是上样量太大的问题

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是用阿霉素处理24h的293T细胞,上了一个15,25,35ug的梯度。有时做的beta-actin上5ug细胞蛋白都会有点连起来的样子。除了上样量的原因还可能是什么原因?
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是用阿霉素处理24h的293T细胞,上了一个15,25,35ug的梯度。有时做的beta-actin上5ug细胞蛋白都会有点连起来的样子。除了上样量的原因还可能是什么原因?

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请把样品跑一个SDS-PAGE,考染后挂上图来
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wood533[使用道具]
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用BSA封闭及稀释一抗试试

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谢谢楼主的指点。我还有一个问题,我想做135kD大小的E-cadherin蛋白,请问上层胶下层胶的浓度,跑电泳的条件,和转膜的条件分别是什么?有什么需要注意的东西吗?
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版主你好!我想问一下

1.内参B-actin,43kd,80V恒压转膜应该转多少时间,期间电流应该保证多大?
2.tlr3,117kd,80V恒压转膜应该转多少时间,期间电流应该保证多大?
3.两个蛋白能否一起转,时间是多少?
谢谢版主
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NBA[使用道具]
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谢谢楼主的指点。我还有一个问题,我想做135kD大小的E-cadherin蛋白,请问上层胶下层胶的浓度,跑电泳的条件,和转膜的条件分别是什么?有什么需要注意的东西吗?

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浓缩胶:5%
分离胶:10%
转膜:恒流,300mA ,2h
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