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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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老师您好,请问我用公司的浆-核蛋白提取试剂盒做核蛋白NF-kB p65表达(我做的是腹腔脏器肾脏、肾上腺等器官),
1)文献中有的用的是actin做内参不正确吧?那么应该用lamin还是Histone呢?
2)lamin有A/B/C,Histone也有H1/2/3/4。那么,我该怎么选择呢?
急盼回复,十分感谢!
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用内参先摸索好条件

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我之前内参一直做得可以的
还要用内参摸什么条件呢
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最近做perk,总是做不出来,或者背景深条带浅,但是总蛋白做的很好,有些疑问:
1、蛋白裂解后要马上变性吗?我因为BCA法测总蛋白,配平总蛋白需要时间,不能马上变性。
2、变性后不要室温冷却而是直接放冰箱吗?我们实验室好像都是室温冷却再放-20.
3、封闭用10%的脱脂牛奶有问题吗?网上都说用5%的
4、二抗用5%牛奶稀释,还是5%BSA,还是TBST?
5‘条带不明显是抗体(CST)原因还是蛋白不够多呀(加样总蛋白估计有60ug)?
急求楼主回答,我现在做了不下七次了,劳心劳力,很纠结。
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楼主,想请问下不同组织提取的蛋白做actin,大小会不一样吗?

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相同种属的大小应该是一致的
不同种属大小事不同的
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您好,我用小鼠的脾淋巴细胞做磷酸化WB,分离细胞完成后分别刺激0,10,20,30,60min和6h,到时间后就收集细胞于冰上预冷的EP管,3000rpm/5min后弃上清,没洗涤,直接涡旋后加裂解液(已加入蛋白酶磷酸酶抑制剂,是根据园子里那个很火的磷酸化WB帖子上的配方),大约5*106个细胞加50ul。冰上作用30min,12000rpm/15min,取上清+1/4体积5*SDS-buffer,100‘C/5min,常规WB步骤,其余样本冻存-80。
因为之前普通WB已经做的比较熟练,也挺有信心,刚开始磷酸化WB,比较担心样本收集的问题。目前已经做了三四次,收集样本也重复了两次,但是都没有做出条带。我要做的是p-p38和p-JNK以及总蛋白,但是曝光出来一片空白。前两次的那批样本做的还有点高背景,p-p38出现了非常细的条带,我觉得不可用,感觉是不是样本收集时细胞量太少,于是又重新收集的样本,结果这次直接什么都没有。我提蛋白之后未定量,但是这次用的1*10 7个细胞,加150ul裂解液,作用后离心后发现管底有很大一团细胞沉淀,难道裂解的非常不充分吗?因为细胞量太大了?
之前普通WB都是用5*10 6个细胞,加50ul裂解液,没有问题的。这次怎么会一片空白什么都没有啊,非常想知道到底怎么解决。不尽感激~

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一抗哪里的?
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老师您好,请问我用公司的浆-核蛋白提取试剂盒做核蛋白NF-kB p65表达(我做的是腹腔脏器肾脏、肾上腺等器官),
1)文献中有的用的是actin做内参不正确吧?那么应该用lamin还是Histone呢?
2)lamin有A/B/C,Histone也有H1/2/3/4。那么,我该怎么选择呢?
急盼回复,十分感谢!

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你说的lamin B,histone都可以作为核内参

actin也有做核内参的文献
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suiyuanjiuzhu wrote:
我之前内参一直做得可以的
还要用内参摸什么条件呢

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稳定WB系统
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最近做perk,总是做不出来,或者背景深条带浅,但是总蛋白做的很好,有些疑问:
1、蛋白裂解后要马上变性吗?我因为BCA法测总蛋白,配平总蛋白需要时间,不能马上变性。
2、变性后不要室温冷却而是直接放冰箱吗?我们实验室好像都是室温冷却再放-20.
3、封闭用10%的脱脂牛奶有问题吗?网上都说用5%的
4、二抗用5%牛奶稀释,还是5%BSA,还是TBST?
5‘条带不明显是抗体(CST)原因还是蛋白不够多呀(加样总蛋白估计有60ug)?
急求楼主回答,我现在做了不下七次了,劳心劳力,很纠结。

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封闭、稀释一抗用3%BSA-TBST
二抗5%奶粉-TBST

perk做起来如同marker一样好做
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楼主,为何我最近做的指标条带都出现在55KD以下一点的地方,特异性强,不同的指标位置是一样的,如果认为是目的条带的话就和指标大小差多啦。这是什么原因呢?
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楼主,为何我最近做的指标条带都出现在55KD以下一点的地方,特异性强,不同的指标位置是一样的,如果认为是目的条带的话就和指标大小差多啦。这是什么原因呢?

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样品来源是什么?
一抗货号,公司
二抗货号,公司
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