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标题:【讨论帖】western blot问题解答

loli[使用道具]
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请问版主,您的做的HBx蛋白出结果了吗?
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楼主好,想请教一个问题,最近做western 跑胶,转膜后分别孵内参和目的蛋白的抗体,显影时内参条带很清晰,但目的蛋白条带总是出不来,试着调整抗体浓度,一抗用的是santa cruz 以1:500稀释时,显影时全片发亮,以1:1000稀释时,无任何条带。二抗用的是进口分装的,跟内参用的是一个品牌,均以1:4000比例稀释。请问是否是因为抗体浓度不合适,该如何调整,还是因为别的原因。谢谢!

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1、一抗本身特异性等不太好
2、二抗稀释度试试1:10000,1:20000
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老师:我这是内参GAPD曝光后的图片,图片中有的条带出的很不均匀,有的出的蛮好的,膜都重新孵育一抗、二抗两次了,条带还是出的不完整,不知道是什么原因造成的,该怎么改进?

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1、上样孔不齐
2、上样的体积太大,电泳时压不齐
3、转膜后请用丽春红染色检查
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请问版主,您的做的HBx蛋白出结果了吗?

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不好意思啊
转染后的样品依旧没有检测到HBx
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kswl870[使用道具]
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楼主好,我提得是组织蛋白,测浓度蛮高的大概在10ug/ul,每孔上样是30ng
内结果内参条带很好,但是目的很模糊,糊糊的。怎么样才能清楚呢?
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moonlight45[使用道具]
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版主,你好!
我用的NE-PER® Nuclear and Cytoplasmic Extraction Reagents试剂盒提取的鼠肝脏组织核内蛋白PPAR,分子量52kda,一抗买的abcam公司,内参LaminB1及二抗用的novus公司,Pierce® BCA Protein Assay Kit蛋白定量,上样量40微升总计20微克的蛋白,积层胶60V40min,分离胶110v,120minn,300mA恒流PVDF转膜1小时,均用5%的脱脂奶粉TBST室温1小时封闭,一抗均以1:1000及1:2000 二个梯度5%的脱脂奶粉TBST 稀释,4℃摇匀过夜,TBST3×10分钟洗涤,二抗均以1:2000的5%的脱脂奶粉TBST 稀释,室温摇床孵浴1小时,TBST3×10分钟洗涤,PierceECL显色液,经曝光后,内参的两个稀释度均可见条带,但目标蛋白的两个稀释度曝光10分钟仍无任何信号,第一次做weston,不知道什么原因,还望楼主帮忙分析,谢谢!
我从abcam公司网站上发现已有人用该抗体从大鼠及小鼠肝内、脂肪等相关组织及细胞均试验成功,但他们有用脱脂奶粉封闭,有用BSA封闭的,抗体稀释有的用TBST,有的用PBS-吐温,版主你好,你觉得是这方面的问题吗?急盼你的解答,谢谢!
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taoshengyijiu[使用道具]
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版主,你好,我western跑的目标蛋白是170KD的核蛋白,我想请教以下几个问题:
1.用pierce的M-PER全蛋白裂解液提取核蛋白可行嘛,比提胞浆蛋白是否需要时间长一点,之前用这个提,目标蛋白的条带一直都比较弱,药物刺激后目标蛋白的泛素化条带一直跑不出来
2.转膜液中需要加SDS嘛,之前一直在用300mA 1h转膜貌似效果不是很好,我们实验室用的电泳仪是六一的,楼主能不能推荐一个方案
3.电泳液跟转膜液中的甘氨酸、tris碱含量是相同的吗?
急盼版主的解答,谢谢
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kswl870[使用道具]
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SDS分离胶与浓缩胶储存液PH值分别是多少?配胶时要调吗?
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pengke1983[使用道具]
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你好,我的目的蛋白139KD,请问转膜时,湿转需要多大的电压?多长时间呢?谢谢
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zsxan1990[使用道具]
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求助楼主,今天跑western,一块12%,一块7.5%,电泳结束marker条带很清晰,但是转膜后全部条带变成很模糊的,转膜液新配,-20度预冷3小时,恒压400mA, 1个小时,转膜结束后就成这样了,转膜液应该没有问题,请问还有什么其他可能,谢谢!


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2013-3-26 14:31
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