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标题:【讨论帖】western blot问题解答

pengke1983[使用道具]
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最近实验我有个问题,其一是所有膜的背景很深。我想问会不会和TBST有关系,TBST的PH7.4 关系会有很大吗?
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NBA[使用道具]
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最近实验我有个问题,其一是所有膜的背景很深。我想问会不会和TBST有关系,TBST的PH7.4 关系会有很大吗?

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膜的孔径是多少?
二抗稀释度调整过吗?
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彼岸花opp[使用道具]
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缓冲液有所改变?
二抗孵育体系多大?
是否因为您的体系太小而影响了稀释度

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谢谢您的回复。
缓冲液一直是碧云天的二抗稀释液
所谓的孵育体系是指?稀释度是1:10000,但是重复性很差,同样情况(包括时间和稀释度)下两次出现的背景都相当不同。如果是指容量,我用的是一个塑封袋,根据膜的大小用枪头注入适当的稀释二抗进行孵育。
体系太小影响稀释度是指?
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用什么公司的ECL?
货号多少?

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谢谢你的回复,发光液的牌子和货号我没太注意,但肯定是实验室常见的,我看到同实验室的其他人也用这个牌子的。。而且,我用这个发光液发的内参图很好,所以我想应该不是发光液的原因吧。
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ladyhuahua[使用道具]
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另外还想问一下,跑出的内参图条带宽窄不一是不是一定是因为上样量不一样?
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你老板批评是有一定道理的
动物组织一般裂解出来是在10-20mg/ml
进行BCA定量的时候
样品用PBS进行10倍稀释不久在BCA的线性范围了???
多谢老师回复!

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今天我又做了一批蛋白,平均浓度时6——8mg/ml的样子,今天做的标准曲线R方是0.9826 还差那么一大截!
开始我说的是用BSA配制溶液做标准曲线,可是老师说的是BCA定量,我查BCA他是个试剂盒,不知老师说的BSA线性范围是我的BSA的线性范围吗?
老师真智慧,我咋没想到用稀释呢...
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HPLC使者[使用道具]
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你老板批评是有一定道理的
动物组织一般裂解出来是在10-20mg/ml
进行BCA定量的时候
样品用PBS进行10倍稀释不久在BCA的线性范围了???

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还有个问题想请教,细胞的通常都是2-5mg/ml的样子,为什么动物组织通常都要做到10-20mg/ml呢?差别这么大,我想大的浓度早晚也要调低的呀,如果把动物的组织按细胞的2-5mg/ml,会有什么不良后果吗?究竟是什么道理呢?因为有时候会有些动物标本组织块比较小,比较珍贵,能不能这么做呢?
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vivian4123[使用道具]
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1、操作没有问题
2、所有试剂的质量需要考虑

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谢谢老师。
我目的蛋白可出来条带,说明系统还可以。应该主要是内参抗体出问题啦。我再稀释内参抗体看一下。
为省点膜,我把胶切开,目的蛋白部分和内参部分分别转吧。请问一下,目的91kd,内参43kd,湿转的话,最好的转膜条件应该是怎样的?
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NBA[使用道具]
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谢谢您的回复。
缓冲液一直是碧云天的二抗稀释液

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所谓的孵育体系是指?稀释度是1:10000,但是重复性很差,同样情况(包括时间和稀释度)下两次出现的背景都相当不同。如果是指容量,我用的是一个塑封袋,根据膜的大小用枪头注入适当的稀释二抗进行孵育。
体系太小影响稀释度是指?
一抗、二抗重复回收使用?
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NBA[使用道具]
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另外还想问一下,跑出的内参图条带宽窄不一是不是一定是因为上样量不一样?

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1、上样量总蛋白、上样体积不一致
2、梳孔大小不同
3、转膜的影响
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