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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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版主您好,请教以下几个问题:
1、有的一抗会标明 样品必需是non-reducing and non-denaturing,这是什么意思?
2、能具体给出样品制备或准备的操作注意事项吗?与需要变性的样品准备有什么不同之处?
谢谢!

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1、non-reducing:指loading中无DTT及β-巯基乙醇等还原剂,可以含有SDS,需要加热变性
non-denaturing:指loading中无DTT及β-巯基乙醇等还原剂,不含有SDS,不能加热变性
2、这个所来就话长了
没有特殊说明的情况下:样品都是还原,变性的
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NBA[使用道具]
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您好,今天是我第一次做斑点印迹实验,可是为什么我的片子洗出来贴着膜的部分整个都是黑的,而点了样,原本应该发光的地方却有点发白呢。。。

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调整一抗、二抗稀释度
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请教一下WB的问题,我做的是大鼠肾脏动物蛋白 内参是GAPDH 另两个分子量在52和90左右,感觉很不稳定,不明白 条件和以前一样的 现在出不来

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目的不稳定还是?
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NBA[使用道具]
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楼主,你好,最近一直为WB困惑,下面是我的胶片.同样的重复做了三次,上面一排是内参,下面的是目的蛋白,分子量是27KD.上样量30ug,胶是15%的,电泳是80V,110V,共80分钟;转膜是湿转,200mA,时间60分钟.封闭是5%脱脂牛奶,一抗浓度1:500过夜,二抗1:5000两小时,分别用TBST洗3次,每次洗10分钟.目的蛋白的条带能看的到吗,背景是不是有点脏,该如何解决,谢谢.

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二抗用1:10000
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xyw5[使用道具]
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我现在封闭是用5%牛奶,1小时,请问曝光结果与封闭时间有关吗?有的话,该如何改进.此外,我今天又做了一次,上样量加大了,成为40ug,一抗浓度分别采用一1:500和1:1000,二抗浓度是1:2000,加发光液后,内参很弱,曝光后只看到很细的条带;目的蛋白和以前差别不是很大.请问,加大上样量后,内参应该变粗啊,我的怎么变细了?非常感谢.
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xueyouzhang[使用道具]
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1、non-reducing:指loading中无DTT及β-巯基乙醇等还原剂,可以含有SDS,需要加热变性
non-denaturing:指loading中无DTT及β-巯基乙醇等还原剂,不含有SDS,不能加热变性
2、这个所来就话长了
没有特殊说明的情况下:样品都是还原,变性的
谢谢版主。

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我的抗体说明书上写的是:The product does not react with the thermally-denatured molecule. 是否指的就是non-denaturing呢?还是指在加的loading buffer中可以有DTT及β-巯基乙醇等还原剂和SDS,而仅仅不加热变性呢?
还有一个问题请教版主:我们购买的一抗要怎么验证这个抗体的真假?有专门的防伪网站吗?
谢谢!
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xueyouzhang[使用道具]
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这两个蛋白分子量比较大,不是很好检测
我检测过一些特异性不是很好

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请问版主最后有没有做出结果,能不能提供抗体的信息呢?
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阿司匹林[使用道具]
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版主你好,我最近遇到一个问题,我通过排除实验证明了我的1抗B-actin及2抗均是有效的,我用了我一个老师1月前的膜,砸出了清晰的B-actin,但是却砸不出我自己的这几张膜,我需要砸的这几个膜用丽春红染色均有清晰的条带显影,但是这几张膜就是砸不出任何条带,包括VDR,AT1,AT2,B-actin等等用凝胶扫描系统每次都扫描都是白板,一开始我还以为是洗脱时间过长,后来我只洗3分钟,还是白板,所以我就请问,会不会什么原因造成这些膜上的蛋白失去活性?无法与一抗结合?还是什么其他原因引起的呢,我在收细胞后放入蛋白裂解液的持续时间这个时间有讲究么?我觉得我跟老师唯一的区别就是我放入蛋白裂解液后把他放冰箱4℃放了一晚上,会影响蛋白活性么?我头真的很大,望指教。
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阿司匹林[使用道具]
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你好,我停了几个月没做试验,今天重新开工,结果发现跑WB时,蛋白样品跟Marker都在浓缩胶里分离了。
所有的试剂都新配的,而且配胶的试剂跟电泳缓冲液的pH也是昨天晚上才调的,应该没问题,后来想起来,去年也出现过类似情况,但是还没弄明白的时候就自己恢复了。
特此向NBA老师请教,谢谢!

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什么叫在浓缩胶里分离了,是不是加到1道,结果漏到3道旁边甚至浓缩胶和分离胶的交界面去了?如果是我也遇到过,是因为枪压得太狠了,枪头像楔子一样把玻璃板顶开了缝隙,就漏出去了,如果不是我就不知道了,等版主吧
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麦丽素1986[使用道具]
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楼主,你好,问下我做western,转膜后丽春红染色,只能看到一个条带。这有可能是什么原因,我刚开始做这个,实在不懂,希望能得到你的指点。
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