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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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76kd蛋白,电流200mA,转膜2.5h就差不多了。
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您好,我也要做WB,新手,实验设计中,其中好多问题不懂想请教谢谢老师

1内参需不需要买标准蛋白,还是只卖内参的一抗、;内参怎么选呢如果分子量和目的蛋白差不多的 话是不是到时候就跑不开了

2我要测大鼠的MMP-2(72kDa),MMP-9(92kDa),β-DG(43kDa),和P38不知道要买哪个公司的我查了一下abc的好贵都四千多其他性价比高点的有哪个公司的,迷茫中

3除了一抗以外WB中所需的试剂有哪些需要买进口的?买国产的可以吗,您觉得哪个公司的好一些呢

初来乍到,问题颇多,谢谢大侠指教

刚才您的解答我看不见可以再帮我发一遍吗谢谢您

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1、内参不需要标准蛋白。买内参一抗即可
常用内参有三种GAPDH(37K),b-actin(43K),b-tubulin(53K)
有时候分子量差的不多的话可以stripping后再孵育内参
2、看看CST的吧,MMP-2、MMP-9,P38我都用过CST的,不错
3、我们用的试剂90%都是进口的
国产的我只用:BSA(这个不好进口),NaCl,无水甲醇等,其他都是用进口的,以Sigma为主
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大侠那我要是测不同的蛋白就需要购买不同的Marker吗,你建议一般买那个公司的谢谢

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marker一般买一种就可以了
marker有一个分子量范围,选择一下即可。我们常用fermentas的
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您好老师:我现在要做的目的蛋白分子量540kda,需要用梯度胶吗?内参选择转膜跑胶的条件是怎样的?谢谢

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需要梯度胶
如果不做内参的话
可以选择普通的6%的分离胶
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版主您好。
最近在做Collagen Type I 这个蛋白的WB,一抗中注明需要non-reducing和non-denaturing的蛋白样品,我根据native page 的protocol 完成实验:1、配制的细胞裂解液中去除SDS;2、上样loading buffer中去除SDS和DTT等还原剂;3、PAGE制备5%的分离胶和层积胶,均不含有SDS;4、样品不加热变性;5、running buffer中不含SDS;6、电泳110V(实际只有60V),跑得比较慢,大概8个小时溴酚蓝到达底部;7、转膜恒压80V,3h;8、封闭1h,洗膜6次,5min/次,一抗:1:500,4度过夜,洗膜6次,5min/次,二抗:1:1000,之后加ECL,曝光。(丽春红染色及曝光X片见下图)
我的问题是:1、没有变性的样品电泳后,因为分子量比较大,都集中在分离胶的最上面,从我曝光的情况来看,条带很模糊,是不是抗体特异性不好或者是我的样品在电泳和转膜后已经变性?
2、转膜的时间是不是要延长,并把电压或电流减小,因为电流过大温度过高会导致蛋白变性。
3、版主以前是否有做过native PAGE的经验,以上的操作是否有错误,请指导一下,谢谢。

丽春红染色膜左边的的条带是预染Mark,在最上面可以看到被染色的蛋白条带;曝光的X线片在相应的位置也有条带,但不是很明显。而且在曝光完这两个胶片后,在次曝光就什么也没有了。

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没做过native page
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老师,你好

我是个新手,第一次做的时候ECL发光后能看到膜上明显的荧光,但是2min,5min,10min分别曝光后根本没有条带。片子完全是透明的。求解~

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那就是胶片的问题喽
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请问前辈能不能给详细讲下如何进行Stripping,包括液体配制,如何洗涤,使用次数?万分感谢

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stripping这个简单
液体的配制这个不方便告诉你
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前辈我也是用这个条件转膜,我想问一下这个条件适用于多大分子量的蛋白?大分子量的应该增加电流还是增加时间?

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增加时间
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老师您好!我是新手,做了两次WB,背景是亮的,条带是黑的,这是怎么回事呢?
还有,actin跑得粗细不一,同一上样孔的蛋白跑出了几个条带。求解!
希望得到您的指导!

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你说的是哪一步? 背景是亮的,条带是黑的没理解
有图片吗
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fox_79[使用道具]
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1、内参不需要标准蛋白。买内参一抗即可
常用内参有三种GAPDH(37K),b-actin(43K),b-tubulin(53K)
有时候分子量差的不多的话可以stripping后再孵育内参
2、看看CST的吧,MMP-2、MMP-9,P38我都用过CST的,不错
3、我们用的试剂90%都是进口的
国产的我只用:BSA(这个不好进口),NaCl,无水甲醇等,其他都是用进口的,以Sigma为主

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谢谢您的给我的帮助 最近一直也在查阅过程中 发现自己有的问题很低级 感谢您耐心的解释 真心感谢!!
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