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标题:【讨论帖】western blot问题解答

fsdd817[使用道具]
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前辈你好:
我是新手,刚开始WB,我的蛋白分子量是156kd,能不能给推荐一下电泳的时间,电压。转膜的时间,电压(我们实验室半干转和湿转都可以做);
我配的都是10x的电泳缓冲液和转膜缓冲液,有的师兄说可以直接使用然后回收,有的师兄说稀释为一倍的使用,自己有点迷茫了。请前辈指教
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bs4665[使用道具]
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楼主您好,我想请教能使背景干净或变淡一点的方法。下面是我做的western blot 条带。

一抗1:1000,4度,16小时,二抗 1:1000,室温,1小时。
曝光使用ECL+, 因为我要看的条带是120kDa, 目的条带不清楚,所以在暗盒和developer中的时间长一点了。
能否给个建议改善哪一方面再试一试呢?


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tangxin_80[使用道具]
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您好,我最近做western有个问题,就是我的marker跑出来的条带颜色很浅而且很宽,以前也是用这个marker也没有这个问题,应该是最近的胶的问题,但是不知道问题在哪里,求指导!谢谢!
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yychen[使用道具]
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配裂解液忘记调pH值了,提取完一测才5.9,会有很大影响吗?
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ha111[使用道具]
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有关Western blot的问题请提问
我会及时给大家解答

希望大家提问的时候尽量把问题说的详细一些

需要联系方式请站内短信息联系

求大神帮我分析原因啊!

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上样完了跑电泳大概八分钟的样子就漏样了,开始怀疑浓缩胶没凝好,后来加长浓缩胶凝缩时间,还是不行;然后怀疑是制胶问题,然后换人制胶(上样、把梳子还是我),跑起来还是漏。到底是什么原因呢?
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shenkunjie[使用道具]
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老师您好!
最近做wb遇到了很严重的瓶颈,原来能出来的所有条带,现在一个都出不来,β-actin 的信号也很弱,希望您能够给一些建议:
需要蛋白是40-190 kD 的蛋白,跑胶和电泳时按照前面跟您讨论的结果做的,湿转后,用甲醇活化,可以在目标蛋白区域看到很明显的条带,可是在敷完抗体曝光以后,β-actin 的信号很弱,继续曝光后,原本有的信号也没有了,而目标蛋白区域直接未出现条带。
请问老师,这问题可能会出现在哪里?
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redbutterfly[使用道具]
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二抗用1:10000

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您好,我用了1:10000的稀释比还是黑漆漆的一片,请问是什么原因啊
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wmp1234[使用道具]
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看上去好像是电泳时没浓缩好,浓缩胶是不是太短了?导致分离效果不好。

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浓缩胶不短啊,而且其他泳道也没出现这种情况
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8s5g[使用道具]
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我想请教一下关于样品缓冲液的问题,我们实验室一直用的是fermentas的5X protein loading buffer 加入5%比例的巯基乙醇,然后在100度加热5分钟 ,结果时好时坏,我觉得这步应该很关键,想问您是怎么处理样本的?还有其他更好的样品处理液吗?谢谢
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NBA[使用道具]
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老师你好,我有两个问题:
1:为什么我跑胶(15%的分离胶)小分子蛋白(17KD)几乎都是如下图而不是直的,只有偶尔是值的,但是大蛋白都是直的,marker也是这样的,30K及以上就是直的?是30%AB的问题么?
2:我15孔的胶,17K的蛋白。marker放最左边的孔,标为1孔道,之后依次为2-15孔。western检测偶尔会出现某张膜上一边或者两边的孔中没有信号,中间的反而有,即2、3、4以及13、14、15孔中没信号(都是loarding,理论上上样量都差不多)怀疑是转膜问题,但是marker放最最左边的1孔道转膜没问题。奇怪的是再次重复就好了。我知道这种问题的解决方法之一是重做,但是这样很不爽,偶尔出个问题却不能解决,且一个月中出现三次了,不定时出个问题很抓狂。

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系统不稳定
小分子量条带是不太直的
想直的话用梯度胶系统
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