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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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老师您好!
最近做wb遇到了很严重的瓶颈,原来能出来的所有条带,现在一个都出不来,β-actin 的信号也很弱,希望您能够给一些建议:
需要蛋白是40-190 kD 的蛋白,跑胶和电泳时按照前面跟您讨论的结果做的,湿转后,用甲醇活化,可以在目标蛋白区域看到很明显的条带,可是在敷完抗体曝光以后,β-actin 的信号很弱,继续曝光后,原本有的信号也没有了,而目标蛋白区域直接未出现条带。
请问老师,这问题可能会出现在哪里?

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用的是ECL孵育后,胶片曝光吗?
如果是,ECL厂家是哪里的?
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您好,我用了1:10000的稀释比还是黑漆漆的一片,请问是什么原因啊

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继续稀释二抗
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utt0989[使用道具]
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老师您好!
最近做wb遇到了很严重的瓶颈,原来能出来的所有条带,现在一个都出不来,β-actin 的信号也很弱,希望您能够给一些建议:
需要蛋白是40-190 kD 的蛋白,跑胶和电泳时按照前面跟您讨论的结果做的,湿转后,用甲醇活化,可以在目标蛋白区域看到很明显的条带,可是在敷完抗体曝光以后,β-actin 的信号很弱,继续曝光后,原本有的信号也没有了,而目标蛋白区域直接未出现条带。
请问老师,这问题可能会出现在哪里?


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用的是ECL孵育后,胶片曝光吗?
如果是,ECL厂家是哪里的?

用 的是自己配置的ECL发光液,用胶片曝光,也能爆出来条带,就连β-actin都很细,或者就是出不全,用的是abcam的抗体,1:5000的二抗,今天试了个1:2000,出来的条带还是一样的。


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remenb[使用道具]
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楼主你好,最近才开始ECL显色,我做的是p-ERK和p-p65,一抗是1:1000,二抗是1:5000,加入发光液后只有marker的位置有荧光,其他位置都没有,延长压片时间也没有条带,做actin有条带,条带的荧光很清晰,已经遇到两次这种问题了,回忆操作过程也找不出原因是什么,很上火
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dog002[使用道具]
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老师你好,我想问一下左边的三张图发这样是压片时间过长还是抗体浓度过高??


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楼主用过cell-based ELISA吗?据说做出来的结果跟western一样?
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求助:主要问题是为什么泳道里没有条带,其余的部位这么黑!条件如下:电泳:100v,1.5小时转膜:300mA, 1小时封闭:5%脱脂奶粉 1小时一抗:1:500 封闭过夜4度二抗:1:2k, 室温40分钟ecl曝光后就这样了, 求高人指点!我怀疑:是否是我的蛋白没有转上,转过膜之后,槽里的电泳液都很热了, 膜和胶都很热了, 会有影响么?


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呵呵
这个抗体我用过
效果一般
调整一下二抗稀释度试试吧

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调整了二抗浓度之后,您有做出趋势么?我做了几次,五组均一样的粗细,感觉像在做内参…… 那TGF-β1单抗,版主推荐的是哪家公司的? 跟大鼠组织反应的。
哈哈还有个问题,就是细胞蛋白大概每孔需上多少的量?蛋白总量和体积?我用的是1mm的玻璃板,1mm的梳子,我上了30μg,用抗体孵育好,发现没测出来。想问下版主,细胞蛋白,怎么上最少的蛋白量测出我想要的结果?改用0.75mm的梳子??上多少μg或μl?? 同样条件下,组织50μg能做出来。
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c86v[使用道具]
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老师您好,想请教您两个问题
1. 提细胞总蛋白时培养基未洗干净就加了裂解液,会对蛋白提取造成什么影响吗?(这次细胞状态不太好,漂了不少,没敢使劲洗)
2. 二抗用久了为什么会出絮状沉淀?师兄说是反复4°C室温的结果,老师怎么看。这样的二抗还能用吗?
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老师能不能回答我 非还原-变性的蛋白如何处理?不加DTT 需要加热吗?DTT的终浓度是100mM还是50mM?
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