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标题:【讨论帖】western blot问题解答

yychen[使用道具]
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请看《蛋白质技术手册》汪家政,范明编的

非还原:不能有DTT及beta-巯基乙醇等还原剂

可以有SDS
不加热

marshall80 wrote:
版主您好,请教以下几个问题:
1、有的一抗会标明 样品必需是non-reducing and non-denaturing,这是什么意思?
2、能具体给出样品制备或准备的操作注意事项吗?与需要变性的样品准备有什么不同之处?
谢谢!

1、non-reducing:指loading中无DTT及β-巯基乙醇等还原剂,可以含有SDS,需要加热变性
non-denaturing:指loading中无DTT及β-巯基乙醇等还原剂,不含有SDS,不能加热变性
2、这个所来就话长了
没有特殊说明的情况下:样品都是还原,变性的

能加热变性

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我想问 非还原到底可以加热吗??
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tuuu2[使用道具]
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如图,本想比较一下GAPDH内参好调整上样量,但一个出来了,另一个没出来。最上面是白蛋白67kDa。两种细胞都是rat来源。是不是剪膜时把内参剪掉了,但我感觉可能性不大。请问还有其他原因吗?


[ 本帖最后由 tuuu2 于 2013-4-3 10:51 编辑 ]


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老师您好,
我要做的是大鼠海马组织的WB,测定的是磷酸化Tau蛋白,请问老师我的内参,maker应该怎么选择呢?
谢谢!
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试过阳性样品吗?

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阳性样品是指高表达这个蛋白的样品吗?需要买还是自己提取的就行?
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您好,我最近做Western的时候碰到了一个奇怪的问题,去暗房曝片子的时候发现我的目的条带要不就是前三个泳道特别浅,要不就是后三个泳道特别浅(一共6个泳道),但actin是正常的,而且丽春红染色后条带也是正常的,actin的膜和目的条带的膜都是同步操作的,只是用的一抗二抗不一样,能解决下我的疑惑吗?谢谢啦
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可以用GAPDH或者beta-tubulin呢

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谢谢老师!还有一个问题:
我们每次在做wb前都要配制样品,我们的样品中除了要加5*上缓外,还要加水和DTT,我不知道DTT的作用是什么?它会对我们做的蛋白有影响吗?DTT和5*上缓的比例是1:2。
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用的是ECL孵育后,胶片曝光吗?
如果是,ECL厂家是哪里的?

用 的是自己配置的ECL发光液,用胶片曝光,也能爆出来条带,就连β-actin都很细,或者就是出不全,用的是abcam的抗体,1:5000的二抗,今天试了个1:2000,出来的条带还是一样的。

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这个胶跑的有问题哦
有考染的图片吗?
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楼主你好,最近才开始ECL显色,我做的是p-ERK和p-p65,一抗是1:1000,二抗是1:5000,加入发光液后只有marker的位置有荧光,其他位置都没有,延长压片时间也没有条带,做actin有条带,条带的荧光很清晰,已经遇到两次这种问题了,回忆操作过程也找不出原因是什么,很上火

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p-erk是很好做的
p-p65,目前我没碰到好用的抗体

marker位置有荧光是正常的
1、有些marker本身就是可以发光的
2、有些marker中的蛋白与抗体有反应

一抗用的是哪里的?
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老师你好,我想问一下左边的三张图发这样是压片时间过长还是抗体浓度过高??

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稀释一抗、二抗
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求助:主要问题是为什么泳道里没有条带,其余的部位这么黑!条件如下:电泳:100v,1.5小时转膜:300mA, 1小时封闭:5%脱脂奶粉 1小时一抗:1:500 封闭过夜4度二抗:1:2k, 室温40分钟ecl曝光后就这样了, 求高人指点!我怀疑:是否是我的蛋白没有转上,转过膜之后,槽里的电泳液都很热了, 膜和胶都很热了, 会有影响么?

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首先排除二抗浓度太高的问题
稀释二抗
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