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标题:【讨论帖】western blot问题解答

nn255[使用道具]
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tricine胶不好跑
我跑过,效果不怎么样
这种小分子量的蛋白,我也没有经验

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查一些资料,就是跑非还原的SDS-PAGE。
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xueyouzhang[使用道具]
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5%脱脂奶粉封闭一小时,acting一抗,1:1000,4度过夜,1:5000兔二抗1小时,每次洗膜都是TBST10min,3次,背景总是过高,求老师分析原因。


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yonger[使用道具]
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首先谢谢楼主
我想请问一下 我自己采用试剂盒提取的细胞总蛋白 保存调节是-20摄氏度 但是反复冻融几次之后就会出现絮状沉淀 然后上清里面的蛋白质浓度就很低了 SDS-PAGE之后基本不能够曝光出条带 我用考马斯亮蓝染色发现膜上其实是有蛋白质的 只是量很少很少 我估计是与生成了絮状沉淀有关 请问这个问题要怎么解决 谢谢!
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misswu61[使用道具]
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谢谢楼主 想问您一下 20KD一下的小蛋白的转膜时间应该大约在多久?多少电压呢?
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00无名指00[使用道具]
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最近在做HSP27蛋白的western blot实验,但是做了很多次都没有结果。内参能做出来,但是目的条带就是没做出来过。我用的是10%的分离胶,5%的浓缩胶。转膜:半干转15V 30min(27kd的蛋白转膜时间是多少?会不会转过的情况?)。封闭1.5h,一抗1:1000过夜,二抗1:10000 37度1.5h,最后目的条带没有。请教高手指点迷津!
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fox_79[使用道具]
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您好!有没有遇到这样的情况,就是最后扫描出的条带上会有很多纵行黑色杂质(请看下图),本来跑出来的条带还不错的,结果全被这些脏东西毁了,我不清是哪里出问题了,帮我分析一下哪些环节可能出现这样的情况,最近跑的两次都是这样,以前都没有出现过这样的情况的。谢谢您!还有就是有的条带中间破开,又是什么原因呢?


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我做的大致步骤描述一下,上样体积在10-17微升间,电泳:80V,120V;电转:恒流220mA,时间为分子量的2倍;封闭:5%奶粉,摇床1.5h;一抗(1:100;santa cruz多克隆抗体)4度孵育16小时;二抗(1:10000,荧光标记二抗)避光,摇床孵育1h;我怀疑是不是PAGE胶有问题,因为除开TEMED是现成的,其他的都是自己用粉剂配制的。另外Tris-hcl(PH8.8和 PH6.8)均未经高压灭菌保存,配好后直接放在室温(现在开着空调,23度);所以我怀疑是不是被污染了;
我还想我问一下,这些配置PAGE胶的试剂能否都放4度保存;还有1*电转液和电泳液能否回收使用,有没有次数限制;
这些是我最近的疑问,问得有些多,谢谢啦!
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您好:我想请教一下,我第一次做western,目的蛋白320KD,想请教一下浓缩胶和分离胶的浓度,电泳时在浓缩胶和分离胶中的条件(恒压还是恒流,数值多少较合适),以及转膜的条件?

因为做实验时间不是很多了,望能尽快给予指导,先在此表示感谢!
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5%脱脂奶粉封闭一小时,acting一抗,1:1000,4度过夜,1:5000兔二抗1小时,每次洗膜都是TBST10min,3次,背景总是过高,求老师分析原因。

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调整二抗至1:10000
孵育时间:30min
室温
洗膜:3min,5-6次
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NBA[使用道具]
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首先谢谢楼主
我想请问一下 我自己采用试剂盒提取的细胞总蛋白 保存调节是-20摄氏度 但是反复冻融几次之后就会出现絮状沉淀 然后上清里面的蛋白质浓度就很低了 SDS-PAGE之后基本不能够曝光出条带 我用考马斯亮蓝染色发现膜上其实是有蛋白质的 只是量很少很少 我估计是与生成了絮状沉淀有关 请问这个问题要怎么解决 谢谢!

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这种现象正常的
不能在-20度保存提取的蛋白样品
需要用-80度冰箱或者液氮
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