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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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谢谢楼主 想问您一下 20KD一下的小蛋白的转膜时间应该大约在多久?多少电压呢?

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湿转:300mA恒流,20-30min都可以
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最近在做HSP27蛋白的western blot实验,但是做了很多次都没有结果。内参能做出来,但是目的条带就是没做出来过。我用的是10%的分离胶,5%的浓缩胶。转膜:半干转15V 30min(27kd的蛋白转膜时间是多少?会不会转过的情况?)。封闭1.5h,一抗1:1000过夜,二抗1:10000 37度1.5h,最后目的条带没有。请教高手指点迷津!!!

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内参做出来了?
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您好!有没有遇到这样的情况,就是最后扫描出的条带上会有很多纵行黑色杂质(请看下图),本来跑出来的条带还不错的,结果全被这些脏东西毁了,我不清是哪里出问题了,帮我分析一下哪些环节可能出现这样的情况,最近跑的两次都是这样,以前都没有出现过这样的情况的。谢谢您!还有就是有的条带中间破开,又是什么原因呢?

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样品中有沉淀
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我做的大致步骤描述一下,上样体积在10-17微升间,电泳:80V,120V;电转:恒流220mA,时间为分子量的2倍;封闭:5%奶粉,摇床1.5h;一抗(1:100;santa cruz多克隆抗体)4度孵育16小时;二抗(1:10000,荧光标记二抗)避光,摇床孵育1h;我怀疑是不是PAGE胶有问题,因为除开TEMED是现成的,其他的都是自己用粉剂配制的。另外Tris-hcl(PH8.8和 PH6.8)均未经高压灭菌保存,配好后直接放在室温(现在开着空调,23度);所以我怀疑是不是被污染了;
我还想我问一下,这些配置PAGE胶的试剂能否都放4度保存;还有1*电转液和电泳液能否回收使用,有没有次数限制;
这些是我最近的疑问,问得有些多,谢谢啦!

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1、电转与电泳液我们都不回收
2、不用进行高压灭菌
胶好不好的话,跑完SDS-PAGE用考马斯亮蓝染色
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楼主你好,我最近在做western-blot,样本是猪的肠道黏膜,现在有个220kDa大小的ZO-1蛋白一直没做出来,现将我的实验条件跟你说明一下,望楼主指点一下:
1、样品制备:裂解液配方50mM Tris-HCl 7.4,150mM NaCl,1% IGEPAL GA-360,0.5% Sodium dexycholate,0.5% SDS,10mM 焦磷酸钠,1% Triton-X 100,样品采集后于-80度保存,裂解时采用液氮研磨后以1:9比例加入裂解液(使用时加入PMSF和cocktail)于冰上裂解30min,期间进行旋涡振荡数次,12000r/min-4度离心,收集上清,分装保存于-80度冰箱,上样前调整蛋白浓度后,以1:4比例加入5X上样缓冲液95度-5min变性,上样量为20ug
2、电泳条件:8%分离胶-5%浓缩胶,80V-20min,120V-1h;转膜:冰上湿转200mA-2.5h,染胶后胶上已经看不到蛋白条带
3、封闭:3%BSA室温封闭1h
4、抗体:ZO-1(santa兔抗和羊抗)、zymed(兔抗),3%BSA稀释:1:1000、1:500,1:250(3种比例都尝试过),4度过夜;二抗(兔抗和羊抗)1:3000,3%BSA
图1
图1是三种抗体,不同裂解液裂解的样品:配为上述裂解液配方裂解,NP-40、中和弱为碧云天裂解液
zymed有淡淡的条带,但不在220kDa位置


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图2
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图2是采用zymed兔抗的结果,但条带依然不在220kDa位置
本人的疑问:
1、样品裂解问题:ZO-1属于外周膜蛋白,是不是样品裂解时间不够,还是裂解过了,ZO-1蛋白降解成亚基了,不是是没有裂解出来还是裂解过头了,
2,抗体问题:我这种裂解方法做其它蛋白都没问题,有100多kDa的也没问题,目前就这个蛋白很头大,以前我师妹做出来过一次(图3如下)


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图3-santa兔抗


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图4-zymed兔抗,样品是猪肠上皮细胞样,有进行超声(3s-10次-4度),而我也有作过一次超声裂解的,


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如图5

现在真搞不清是什么问题,我师妹细胞样能做出来,但以前我的细胞样也没做出来过,还烦请楼主帮忙分析一下原因,谢谢


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zsxan1990[使用道具]
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正在做人白细胞Rho 激酶活性 即利用Western 检测MYPT-1,做了好几次都没结果。
6%的胶(目的蛋白 130KD 内参β-actin 42KD) 电泳90分钟,BIO-rad湿转 2小时 260ma ,一抗 1:300-500都试过(santa公司的 推荐 1:100-1000)孵育过夜,摇床复温2h, 二抗 1:5000-10000(推荐 1:5000-100000) 孵育2h,ECL发光,除目的蛋白有些非特异性的发光外(很少),内参一片空白,请老师解惑。
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