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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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6001
 
我现在在进行特定细胞器提取蛋白的试验,由于技术所限,每次得到的样品只有20-30uL,推测浓度在100ug/ml以下。
现在要做IP,肯定要求上样量一致,但是我们用BCA的Kit无法检测出样品浓度。试验组和对照组有细胞器含量的差异,因此也不能采取细胞数一致的方法来上样。
现在摸索着跑了几次IP,都有上样量的差异,求助!
另:我们实验室没有分光光度计....只有酶标仪

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样品量太少,没辙
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6002
 
老师你好!我又来跟你请教问题了。我的目的蛋白还是没有做出来,现在是一点都做不出来了。我的实验条件如下:
电泳:80V浓缩胶,110V分离胶。
转膜:250mA 90min
5%脱脂牛奶封闭2小时
一抗:20小时
二抗:2小时
目的蛋白是29KD的,因为我提取的蛋白的浓度较低,所以为了保证40ug的上样量每次上样25ul。
请指教!

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目的蛋白名称?
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老师您好:我今天提了一批肝组织蛋白,强效裂解液,1:7.5提取的,测出的浓度还是很高,平均都在20ug/ul,如果按上样量100ug的话,上5ul就可以了吗?会不会有影响啊,这样的浓度我都不知道该咋办了,期待老师的意见

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蛋白变性的时候要稀释样品,调整到2-4ug/ul
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yjf1026[使用道具]
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老师,您说的再稀释是煮蛋白前还是煮蛋白后?麻烦了
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目的蛋白名称?

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8princess8[使用道具]
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从外周血提的蛋白,分子量50kd,上样量30ug,50,100v电泳,200mA,1.5h湿转,5%脱脂奶粉室温封闭1.5小时,Abcam抗 1:1000TBST稀释(说明书上的图片推荐1:1000)4°C孵过夜,国产二抗1:5000TBST稀释(推荐1:5000-1:10000)室温1小时。都是TBST洗膜3*10min,TBS洗膜1*10min。actin和目的条带还可以,可是背景特别深,还请各位高手指点迷津。


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fangweibin119 wrote:
不会有影响
可以染色

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染过之后 有的有红色条带 有的没有 他们都说蛋白的问题不大。。。。 最近做 还是曝不出来 我做的是akt pakt您以前做过吗 给点建议吧。。。。要崩溃了啊。。。
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老师,您说的再稀释是煮蛋白前还是煮蛋白后?麻烦了

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变性蛋白前
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6009
 
AQP2

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这个是膜蛋白
不是很好检测,抗体本身会有很大的原因
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6010
 
从外周血提的蛋白,分子量50kd,上样量30ug,50,100v电泳,200mA,1.5h湿转,5%脱脂奶粉室温封闭1.5小时,Abcam抗 1:1000TBST稀释(说明书上的图片推荐1:1000)4°C孵过夜,国产二抗1:5000TBST稀释(推荐1:5000-1:10000)室温1小时。都是TBST洗膜3*10min,TBS洗膜1*10min。actin和目的条带还可以,可是背景特别深,还请各位高手指点迷津。

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调整一下二抗稀释度
用1:10000
室温孵育30min
洗膜:3min *5-6次
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