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标题:【讨论帖】western blot问题解答

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请问:我转膜结果用丽春红染色,往往是膜的中间三分之一区域(约100kD至50kD)有比较清晰的条带,而上下两块区域则不多,尤其是下面的三分之一(低分子量)条带很淡。这是怎么回事? 我做脑组织,考马斯亮蓝染胶,条带很丰富;转膜后,胶也很干净。转移液是 192 m mol 甘氨酸、25 m mol Tris、10% 甲醇、0.04% SDS,130mA,7小时。目的蛋白约150KD,还可以杂出来,就是β-actin近来没杂出来或是条带很浅,为什么?
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相关疾病:
心肌梗死

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1,加大抗体浓度
2,会转过,300mA 用30min足够了
3,根据分子量、胶的厚度来确定转膜时间和电流
我一般会确定电流,恒流 300mA(湿转)、半干转我一般确定 恒流 1.2mA每平方厘米膜面积
确定电流后再确定时间
总之是一个比较复杂的过程
需要慢慢体会

可是老师,我的样品中同时含有三个蛋白呢,28KD,40KD,58KD,这样的话我该如何选择湿转条件呢?谢谢!呵呵~

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300mA 40min
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每次转膜都是放在冰盒中转的。蛋白位于细胞质中,用的裂解液是碧云天的“Western 及 IP细胞裂解液”,不知道行不行。由于每次都是actin出来,所以感觉细胞提取不会出问题吧。呵呵,不知道对不对。谢谢!!

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细胞质中的蛋白提取应该没什么问题
actin能出来说明你的过程应该还是没有问题
提取蛋白的时候加入蛋白酶抑制剂了吗?
另外目的蛋白的一抗是什么厂家的?
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想请教,我的目标蛋白分别是33KD,27,19KD,用半干转,15V,45min,只有33的能出来,27和19的都不在膜上,考虑转过了,改14V,43min,转完后丽春红染色,27的能看到泳道,但没有蛋白带,19的连泳道都没有。考虑丽春红无特异性,继续一抗二抗孵育,结果没有一点发光的。考马染胶,没有残留。(另外一个问题,有时染的胶可以隐约看到泳道,没有蛋白条带,算是没转上吗?)
有没什么好方法可以提高小分子蛋白的转膜效率的?
一抗回收再利用,是放4度冰箱保存就可以吗?再利用时会不会因为抗体效价降低而要另外再加一些抗体呢?谢谢

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1,换用0.22um孔径的膜
2,小分子不需要提高转膜效率哦
3,我不建议重复回收利用抗体,稀释比例不好控制
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甲醇活化时间一般是多久呢?我们一般用是十几秒钟,可以吗?

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活化10至15s就可以了
之后用转环平衡
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我们检测的目的蛋白一样,一起电泳转膜的,蛋白标本是不用模型的。之后又一次电压变低跑(因为时间的原因,当时有别的事情),我们的都弥散了。我是不是应该调高电压?谢谢!

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电泳用的是什么条件呢?
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老师,你好,请问为了防止目的蛋白降解,能否在先将动物多聚甲醛固定后再取材呢?

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后续你要做什么?
用甲醇固定之后做WB会有问题的
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Barrett食管大动脉炎

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请问:我转膜结果用丽春红染色,往往是膜的中间三分之一区域(约100kD至50kD)有比较清晰的条带,而上下两块区域则不多,尤其是下面的三分之一(低分子量)条带很淡。这是怎么回事? 我做脑组织,考马斯亮蓝染胶,条带很丰富;转膜后,胶也很干净。转移液是 192 m mol 甘氨酸、25 m mol Tris、10% 甲醇、0.04% SDS,130mA,7小时。目的蛋白约150KD,还可以杂出来,就是β-actin近来没杂出来或是条带很浅,为什么?

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同样的样品与抗体beta-actin你一直做的很好吗?
对于beta-actin来说转膜时间有点长了
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多发性硬化大动脉炎

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细胞质中的蛋白提取应该没什么问题
actin能出来说明你的过程应该还是没有问题
提取蛋白的时候加入蛋白酶抑制剂了吗?
另外目的蛋白的一抗是什么厂家的?

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提取蛋白的时候加了PMSF,一般PMSF的浓度需要多少呢?一抗用过santa cruz的,但买的是分装的,没做出来。现在用的是凯基的,同样没做出来~郁闷ing~
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相关疾病:
心肌梗死

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提取蛋白的时候加了PMSF,一般PMSF的浓度需要多少呢?一抗用过santa cruz的,但买的是分装的,没做出来。现在用的是凯基的,同样没做出来~郁闷ing~

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1~3mM
在水溶液中(裂解液)降解时间是30min
超过30min要重新加入
你做的是什么蛋白?
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