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标题:【讨论帖】western显影常见现象、原因及解决方案

鸽子不哭[使用道具]
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请dreanm2013来帮我分析一下我的这个时虚,时实的情况

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这个问题我也碰到过,我想这个与压片的关系不是很大,因为对同一张膜,我压过好几次,不管时间长短都没法改变这种虚实的情况,显影液也没问题,因为在此片前后压的片都很正常,这种虚实的情况并不常见,我想这种情况可能的原因是,凝胶不好,电泳过程中,蛋白弥散?或是如版主所说,转膜质量出现了问题(并不是转没转上的问题)?
我觉得这个问题出现的偶然,可以再重复一次,看是否还回出现这样的情况,当然在重复的过程中尽量排除一些可以避免的误差。
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lgm[使用道具]
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这个问题我也碰到过,我想这个与压片的关系不是很大,因为对同一张膜,我压过好几次,不管时间长短都没法改变这种虚实的情况,显影液也没问题,因为在此片前后压的片都很正常,这种虚实的情况并不常见,我想这种情况可能的原因是,凝胶不好,电泳过程中,蛋白弥散?或是如版主所说,转膜质量出现了问题(并不是转没转上的问题)?
我觉得这个问题出现的偶然,可以再重复一次,看是否还回出现这样的情况,当然在重复的过程中尽量排除一些可以避免的误差。

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非常感谢您的看法,我们做实验的总是兼听则明嘛.
实际上实验我是重复过的,如果出现模糊的现象,每次出现的区域和区域的大小都是不同的,我也曾经怀疑过是凝胶的原因,非常谢谢甜甜桂香的建议!
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any333[使用道具]
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请版主和各位战友帮我分析一下失误之处及原因

目的蛋白名称:MMP-2;分子量:63kd; Actin;分子量:43kd
样本组织名称:大鼠肾脏
一抗品种(多抗):MMP-2,sc-10736; Actin,sc-7210, Santa Cruz
一抗质量评价:2周前还能做出结果,自从新购买1,2抗后,未再做出结果,1抗未变。
分离胶浓度:10%
转膜方式:湿转 ;
转膜强度(恒压)×时间:110 V,50 min
封闭液名称:5%牛奶TBST ;
封闭温度和时间:37度2小时
一抗说明书推荐稀释度:1:50-500; 使用稀释度:1:500; 一抗反应温度和时间: 室温 2h/室温1h+4度过夜+室温1h
二抗说明书推荐稀释度(自从更换2抗后1次也没做出过):1:5000到1:20000 ;实际使用稀释度:1:5000/8000 ;二抗反应温度和时间:室温2小时
洗膜时间×次数:洗三次,10/15分钟均用过
显色(时间)/显影(压片时间):用ECL 显色,显色及压片均5 min
结果描述:几乎是白板,没有出现目标条带,内参也看不到

1. 电泳、转膜肯定没有问题(a.丽春红染过有条带,考马染胶无蛋白条带;b.Marker仅胶上清晰,但转不到膜上????;c.2周前还能做出结果)

2. 1抗较贵,师兄已经说我在喝抗体了,急
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dream2013[使用道具]
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既然内参都有问题,那么建议先停止目的蛋白只作内参,直到内参稳定为止。如下:
1 一二抗不匹配这种低级错误先排除。
2 测试HRP和底物活性:于暗室EP管加底物A、B液各100ul,加入0.5ul HRP偶联二抗,若底物立即发出蓝光并于随后数分钟内消失说明二抗和底物尚好。
3 拿一小片灯光下曝光的片子显影定影以确保显影液正常。
4 定性信号过高/过低:做1次内参western,加了底物后立即到暗室看有无荧光。如3min内未看到荧光,那么压一张过夜的片子。或者采用同时压片2~3张,不同曝光时间,具体见1楼。
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sunnyB[使用道具]
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请问,如何解决非特异性条带的问题,对于这个看了您的帖子我还是不是很清楚,显影后我的非特异性条带出现的比较严重,看起来条带几乎都出现了,请问这是不是与封闭的不好有关?
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qumm1985[使用道具]
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是啊,我的也是出现了问题啊,非特异性的问题比较严重,内参部分非特异性的多,但是目的的又还好,不知道为什么呢,难道是封闭的原因,希望哪位高手指点一下呢?还是内参出了问题?
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yychen[使用道具]
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第一次做Western,没敢上抗体,只做内参,但已经有问题了

目的蛋白名称:Actin;分子量:43kd
样本组织名称:小鼠晶状体、视网膜
样本提取:采用先买的RIPA和PMSF。一个星期前取材,第二天提蛋白,-70度保存。
样本浓度:晶体蛋白为80微克/微升;其余的视网膜蛋白为10-13微克/微升。
上样量:50微克,其中晶体蛋白用裂解液(含PMSF)稀释20倍,其余稀释4倍,加现成的5*loading buffer。总上样体积大约在15微升。
样本特殊情况:也因为样本量不多,我按照10微升分装,前天测浓度后,在冰上放了1个多小时,然后放到-20度,第二天跑胶)
一抗:Actin,Cell signal 第一次一个老师没做出来,然后要求公司换了抗体,这次是第一次用)
一抗质量评价:第一次一个老师没做出来,然后要求公司换了抗体,这次是第一次用
分离胶浓度:12% (其中AP,TMED,丙烯酰胺,TRis-HCl PH8.8 原装进口)分离胶过夜)
跑胶:80V-浓缩胶;120V-分离胶(手动换)
转膜方式:湿转 ;
转膜强度(恒流)×时间:60mA,150 min
封闭液名称:5%牛奶TBST ;
封闭温度和时间:37度2小时
一抗说明书推荐稀释度:1:1000; 使用稀释度:1:1000;
一抗反应温度和时间: 4度过夜,但早上发现一抗漏了,重新加一抗,37度1小时+室温摇床1小时
二抗说明书推荐稀释度:1:1000到1:3000 ;实际使用稀释度:1:2000;(进口了,买的时候进两千,别人用过,做出的条带很漂亮)
二抗反应温度和时间:37度1小时
洗膜时间×次数:洗三次,10分钟
显色(时间)/显影(压片时间):用ECL 显色,无荧光,压片5分钟,自动显影
结果描述:内参条带很弱而且很淡
跑胶情况:用的是Bio-Rad电泳槽和电泳仪。本想预电泳,电压为10V,但总被提示No Load,没法跑胶。在浓缩胶的时候,纵向压缩还可以,但是横向扩散很严重,从胶片的创导情况可以看出。但到分离胶后,纵向扩散。
胶和膜的靠然情况:仍然显示串道,五个样本其中有一个样本大分子量部位很淡,但在小分子量的时候有浓聚。
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我是用测浓度的剩余样本跑胶
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tuuu2[使用道具]
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我做WB,actin内参,100V转60min,5%BSA 4度封闭过夜,一抗天津津脉actin,1:200稀释,室温孵育1.5h,然后用TBST洗6次,每次15min,二抗天津津脉1:4000稀释,室温孵育1.5h,TBS洗4次,每次10min,用ECL(Perice)显影,压片1min,背景特高请高人指点谢谢!
还有一个问题,就是转完膜后用立春红染膜,什么也看不到,为什么?谢谢


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tuuu2[使用道具]
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我做WB,actin内参,100V转60min,5%BSA 4度封闭过夜,一抗天津津脉actin,1:200稀释,室温孵育1.5h,然后用TBST洗6次,每次15min,二抗天津津脉1:4000稀释,室温孵育1.5h,TBS洗4次,每次10min,用ECL(Perice)显影,压片1min,背景特高请高人指点谢谢!
还有一个问题,就是转完膜后用立春红染膜,什么也看不到,为什么?谢谢
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