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标题:【讨论帖】最近做原核表达的几点教训和体会

ukonptp[使用道具]
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Streak out: 就是划线培养。

Cam是维持PlysS质粒的。这个菌株就是带了这个质粒,其编码的产物,T7 Lysozyme可以降低在T7 promoter控制下的基因的表达。表达毒性蛋白就是用这种菌株,因为可以更严格地控制本底表达。这个质粒的拷贝数很低。可以和表达载体兼容。为了防止PlysS质粒丢失,菌要在Cam选择压力下培养。一般的Cam用25 ug/ml。这里用35 ug/ml 是不是造成更大的选择压力?

如果你不用这个菌株,用的普通DE3,就不用Cam。

至于括号里那句话我也不知道为什么。是针对BL21 DE3 PlysS来的吧?
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04906[使用道具]
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我这两天又看了一点资料
谈一点关于质粒丢失的心得:
对于amp抗性来说,在培养基大约开始浑浊的时候,amp就已经开始分解了。当OD600值到达0.6的时候,amp抗性就已经分解的差不多了,再往后没有携带质粒的菌生长就开始占优势了。
按照pRSET说明书的说法,在cam和amp中培养过夜,就可以防止质粒丢失,也就不需要按照pET mannul所说的,譬如摇菌到0.4~0.6,4度保存过夜,第二天早晨离心弃上清,再加新鲜培养基稀释,接种。
针对(It is not neccessary to include antibiotics for expression)这句话,如果cam可以保证转化的质粒的量的话,那么在诱导的时候,一般我们都是将菌摇到0.6开始加入IPTG的,如果接种的菌液都可以保证最大比例的质粒含量的话,在OD0.6之前,就不存在amp分解造成杂菌生长的问题了。
这是我个人的理解,不太确定。希望得到讨论。
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ukonptp[使用道具]
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“按照pET mannul所说的,譬如摇菌到0.4~0.6,4度保存过夜,第二天早晨离心弃上清,再加新鲜培养基稀释,接种。”

我认为不用保存过夜吧,接新鲜的菌液不是更好?不知道这一步的目的是什么?

检测菌是不是失去抗性,我认为可以取菌液进行稀释,然后分别涂LB平板和LB+Amp平板。然后看两者数目的区别。
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orangecake[使用道具]
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谢谢楼主,的确值得学习!最后一块胶的电压是多少?谢谢!
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我觉得转接比例不是很重要吧?我们实验室纯化蛋白都是1:8转接的,也能纯化出来。
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ukonptp[使用道具]
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谢谢楼主,的确值得学习!最后一块胶的电压是多少?谢谢!

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电压120 v
What is the problem?
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yes4[使用道具]
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我想问楼主的一个问题是,第二天转接,是不是培养基里就不必加葡萄糖了,因为我感觉没意义,但别的科室加,不明白为什么.
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我想问的是第二天转接的时候,还用加葡萄糖吗?我认为意义不大,但许多科室都加,不知是什么原因.哪位帮我解释一下,谢谢!
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ukonptp[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 yes4 于 2013-4-19 17:33 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

我想问的是第二天转接的时候,还用加葡萄糖吗?我认为意义不大,但许多科室都加,不知是什么原因.哪位帮我解释一下,谢谢!

如果蛋白没有毒性,是不必要加的(LB或者DYT培养基)。
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gogo[使用道具]
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谢谢楼主,的确值得学习!最后一块胶的电压是多少?谢谢!

电压120 v
What is the problem?

谢谢楼主,我最近在诱导一个45kDa的蛋白,一直电泳不成功,拖带,成片,我用的稳流15mA,3.5h。感觉刚接触蛋白就这么麻烦,怎么继续下去做单抗呢?希望指点一下哦~~~还有每个加样孔加的蛋白样品量不一样,会产生影响吗?
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