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标题:【讨论帖】做磷酸化蛋白的Western blotting之我见

04906[使用道具]
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谢谢两位大侠的帮忙
我决定今天把所有液体都配过
重新再做
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98776langtao[使用道具]
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你以前做都是空白,现在洗涤时间缩短,却膜上亮了一片。如果只是洗涤时间缩短的话,按理说不应该如此的。那您洗多短时间?几次?有可能您这次的其它条件改变了,而您不知道,请查一下这次实验有什么操作或试剂改了。

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还有就是一抗用5%BSA TBST稀释的,因为才看到说明书上这么要求,以前都是5%no-fat milk TBST稀释的。
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98776langtao[使用道具]
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洗涤是5min/次,洗三次,一抗是过夜的,二抗37度1小时
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箭头儿[使用道具]
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洗涤是5min/次,洗三次,一抗是过夜的,二抗37度1小时

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二抗室温1小时即可,不用37度。
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二抗室温1小时即可,不用37度。

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谢谢啦,那如果暗室能看到信号,压片却没条带,一般是什么原因呢?
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箭头儿[使用道具]
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谢谢啦,那如果暗室能看到信号,压片却没条带,一般是什么原因呢?

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这种可能性很小,我还没见过这样的。X光片过期了?如果X光片提前曝光则应是全黑的才对。
要不然就是洗片的试剂出问题了。
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98776langtao[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 箭头儿 于 2013-5-2 17:52 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
谢谢啦,那如果暗室能看到信号,压片却没条带,一般是什么原因呢?

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这种可能性很小,我还没见过这样的。X光片过期了?如果X光片提前曝光则应是全 ...

上次就怀疑是显影液或定影液问题,所以换了,结果就一压全曝光了,以为是胶片问题,就拿胶片直接显影、定影,胶片没有曝光,还是蓝色透明的,每次问题都不一样,真快崩溃了哈!
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04906[使用道具]
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再请问一个关于提取核蛋白组织样品的制备的问题。
有方法推荐:对于一般组织,可以称量后切成小块放入机戒组织匀浆器中,按组织净重,加入相应体积的裂解液进行匀浆,离心收集上清(如有粘稠物可超声处理)加入Laemmli样品缓冲液强力混匀,样品置100度的水浴箱水浴加热3-5分钟,10000g离心10分钟,取上清液,样品即可立即使用也可也可以分装冻存,-20℃存放的样品可稳定保持数月。
对于脑组织,是否可以通过液氮冷冻、研磨后,加裂解液后再予超声处理,再加入Laemmli样品缓冲液、煮沸5分钟后提上清保存或上样呢?对于提核蛋白来说,经超声、煮沸处理是否更有效?
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04906[使用道具]
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另外,对磷酸化蛋白来说,上述处理(液氮冷冻、研磨后,加裂解液后再予超声处理,再加入Laemmli样品缓冲液、煮沸5分钟后提上清保存)合适吗?
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kuohao17[使用道具]
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好像PMSF很容易失活,许多WB达人在将组织裂解时,均交代要反复多次添加PMSF,请问裂解及提取上清并进行分装,以后在使用时还要添加PMSF吗?

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我们实验室一般是把细胞裂解液配好以后分装成1ml/支,-20度或者-60度保存,临用前再添加PMSF和cocktail,整个样品处理过程全部在冰上或者4度进行。
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