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标题:【讨论帖】抗体纯化及相关应用实验技术讨论帖

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我做过多次,玻璃纤维没有用过,但滤纸过滤是绝对除不干净的,还会引起一定的乳化作用。

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呵呵,除石蜡不用那么麻烦吧,就能去掉,滤纸、玻璃纤维等都可以用的;
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那我想请问,你们所用稀释液怎么配置的啊?!

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稀释液要看用途的,不同的需要用不同的组分

如果只是稀释一下腹水样品,可以用PBS或者纯水,如果抗体丰度低,不推荐稀释很多倍

抗体浓度太低,影响过柱时的结合
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我对抗体纯化的看法是:不用亲和柱,离子交换柱、疏水柱、羟磷灰石等足以纯化任何抗体,而且费用低廉,又高效。
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最近实验室做了些兔多抗,染出来特异性很差,杂带多而且很亮,想纯化一下又没有经验,请问楼主
1我们没有染出目的条带,不知道做完纯化能不能实现从无到有
2有两条杂带每次都有,在55KD-72KD一条,42KD-55KD一条,以楼主经验看,这是什么带啊,什么原因
3不知道抗体纯化对技术要求怎么样,我们没有做过的这种实验。
4楼主有没有比较推荐的详细步骤
5看了楼主是公司的大牛了,实验室以后还要制备抗体,不知道楼主对抗体制备和纯化的公司和条件有没有什么推荐
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QUOTE:
原帖由 TNT 于 2013-5-8 15:11 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

最近实验室做了些兔多抗,染出来特异性很差,杂带多而且很亮,想纯化一下又没有经验,请问楼主
1我们没有染出目的条带,不知道做完纯化能不能实现从无到有
2有两条杂带每次都有,在55KD-72KD一条,42KD-55KD一条,以楼主经验看,这是 ...

您指的兔多抗染出来是拿兔血清直接做的WB?

1,血清当一抗直接做WB,如果没有主带,纯化后有可能做出来,特异性的抗原亲和纯化可以起到一定的浓缩作用,但是也有可能做不出来,毕竟纯化不是万能的。

另外对于WB,我想建议的是,如果有抗原蛋白,最好拿抗原蛋白跑胶做阳性对照,其次拿细胞裂解液或者组织裂解液做筛选,如果一种细胞裂解液做了好几次都失败,阳性CONTROL每次都出来,可以考虑换几个细胞株的裂解液试试。

2,你说的杂带,最好把图贴出来,标明裂解液

3,4抗体纯化做做是不难,只要一路都顺利。详细的PROTOCOL坛子里应该有,可以搜索一下。

5,制备抗体,如果自己有建立平台和靠抗体制备发文的需求,那不管多难都要自己做的;如果只是短时间需要用到,买又买不到,可以考虑外包给专业的公司做。
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我想问楼主,就是我做抗原亲和纯化抗血清,用pH2.5 Gly洗脱时,前2管总是有沉淀,您说沉淀是什么呀?
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QUOTE:
原帖由 plaa 于 2013-5-8 15:12 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

我想问楼主,就是我做抗原亲和纯化抗血清,用pH2.5 Gly洗脱时,前2管总是有沉淀,您说沉淀是什么呀?

多抗比单抗容易沉淀,不同的抗体,互相聚集沉淀的最低浓度是不一样的。

你这个可能刚好碰到这个抗体比较容易沉淀。

你可以改变这个洗脱液的PH ,其实3就够了,没必要非2.5不洗。

另外可以减慢点洗脱流速,让抗体在配基上缓慢脱落,或者减少一次上样量。

预防为主,这样的沉淀,大部分后期是无法复容的。

其他方法也有,比如加甘油什么的,但是我觉得添加剂这个东西,看后期实验需要,有时能不加最好不加
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您是说沉淀的肯定是我的抗体吗?
而且沉淀只能扔掉是吧?
怎样减慢洗脱速度呢?我是靠重力流出的。
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QUOTE:
原帖由 DDD 于 2013-5-8 15:13 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
您是说沉淀的肯定是我的抗体吗?
而且沉淀只能扔掉是吧?
怎样减慢洗脱速度呢?我是靠重力流出的。

只要你上完样,平衡柱子彻底(10倍柱体积以上),那沉淀的一般都是抗体,而且多抗发生这种情况居多。

像你这种重力流的,流速已经很慢了,那你就减少些单次血清上样量,多纯化几次也一样能拿到大部分抗体
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沉淀是在洗脱出来形成的,那么在预先收集的管子里先装上偏碱性的缓冲液来中和酸性洗脱液,会有好的效果,可以防止沉淀形成。
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