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标题:【讨论帖】抗体纯化及相关应用实验技术讨论帖

ukonptp[使用道具]
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其实这个问题,色谱兄也提到过,比如最常见的就是某些抗体在pH下易聚集沉淀,这样低pH洗脱中和后,得到抗体是沉淀的。
解决方案:根据我的经验,可以选用配基亲和力适中的亲和层析方法(包括自己偶联配基时的配体选择,亲和常数要适中,既保证高的选择性,又兼顾洗脱方式尽量温和),这样洗脱条件温和有利于避免蛋白的沉淀变性;其次,洗脱的缓冲液中可以加入添加剂,如有文献报道arg了,同样的pH下,arg和w/o arg的洗脱强度有显著差异;另外,有的只能选用其他方式,如HIC等。
曾经做过同样是mouse的IgG2a,但洗脱pH相差很大,所以多数情况下可以按一般的protocol来操作,但遇到问题的时候只能具体分析了,抛砖引玉,呵呵
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ffooll[使用道具]
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其实,如果不采用亲和层析,就不会有沉淀出现了.并非亲和层析是抗体纯化的首选
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orangecake[使用道具]
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请问楼主住否做过抗体亲和力改造实验 可能是要做基因工程改造
是否有好的参考的资料 实验的大致方法如何 周期多长 谢谢
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蒜泥面条[使用道具]
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抗体的修饰,根据不同的需要,现在常用的主要是人源化 糖基化 PEG化
至于修饰后的亲和力变化,那还是需要经过筛选才能知道,也许变好也许变坏,这个没有什么特别的规律和诀窍,修饰以后的抗体活性只有检测才知道,很难事先预测,定向突变。

尤其是人源化,在抗体药的研发道路上是不可避免的,有时过分追求100%的人源化,往往对抗体的损害是实现意想不到的。

总的来说对于蛋白质的功能结构,人类了解的还不透彻,所以擅自的改动,经常有意外

方法可以看看相关的书籍,这方面都是抗体技术比较前沿的东西,一般厂家都比较神秘,呵呵
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ladyhuahua[使用道具]
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我们也是离心后,用10ml注射器针头平端沿内壁下移至腹水层将腹水慢慢吸出来,这样可以避免石蜡油污染~··

========================================================================================

很多实验技术,都是看起来原理简单,方法常规,但是真正做起来就会发现这样那样的问题和情况,你遇到过,就会知道实际情况比理论要复杂,这个就是所谓的经验了。

腹水里面和血清里面,有时经常有油脂类或者SKYKILLER提到的石蜡油,很讨厌,我们也经常遇到。

我们一般是使用稀释液把样品稀释,然后高速离心,然后小心拿出来,油脂类的会浮在液面上,然后就用棉签之类的挑去。样品稍微会有些损失,但是因为稀释过了,单位体积里的抗体损失比原液就少很多。

不知道还有没有什么更好的方法:p
期待路过的大侠们多发表意见
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911[使用道具]
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楼主,请问一个问题,我们准备抗体,用免疫亲和纯化以后,用pbs缓冲液透析,经常会发现抗体出现沉淀的情况,请问这是什么原因,该如何避免?
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QUOTE:
原帖由 911 于 2013-5-8 15:53 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

楼主,请问一个问题,我们准备抗体,用免疫亲和纯化以后,用pbs缓冲液透析,经常会发现抗体出现沉淀的情况,请问这是什么原因,该如何避免?

多抗吧

你用PBS透析只是为了缓冲液置换?

那我推荐你用超滤的方法,塞托利斯的离心式超滤管。透析的时间太长,我们一般不采用。

但是既然你这个抗体那么容易沉淀,你超滤的时候工作浓度最好也别太高,建议低于0.5mg/ml
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911[使用道具]
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回复 #58 蒜泥面条 的帖子

是多抗,纯化以后ph太低,需要有pbs透析。请问沉淀是什么原因导致的,浓度太大?出现这种情况和抗体的质量有关系么?
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蒜泥面条[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 911 于 2013-5-8 15:55 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
是多抗,纯化以后ph太低,需要有pbs透析。请问沉淀是什么原因导致的,浓度太大?出现这种情况和抗体的质量有关系么?

你洗脱后没用TRIS中和到pH7?
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蒜泥面条[使用道具]
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说错了,是中和以后,需要透析到pbs体系,出现沉淀
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