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标题:【求助】杆状病毒——昆虫细胞蛋白表达系统...

ffaa[使用道具]
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我们使用的胰酶过了有效期,浓度是0.5%(1640配制),一般0.25%就好了。消化很快呀(3-5min),你再试试。

You are welcome. Good luck!
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mamamiya[使用道具]
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我也在做sf9细胞表达蛋白,但是蛋白表达量没有你的高。目的蛋白分泌到上清中。纯化蛋白时,100ml细胞上清液仅能纯化约100ug蛋白。我的纯化方法是:细胞上清用PBS透析几次,然后过NTA-Ni柱。能否将你的蛋白纯化方法共享一下,谢过!
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QUOTE:
原帖由 mamamiya 于 2013-5-11 15:53 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
我也在做sf9细胞表达蛋白,但是蛋白表达量没有你的高。目的蛋白分泌到上清中。纯化蛋白时,100ml细胞上清液仅能纯化约100ug蛋白。我的纯化方法是:细胞上清用PBS透析几次,然后过NTA-Ni柱。能否将你的蛋白纯化方法共享一下,谢 ...


以前做过杆状病毒分泌表达的纯化工作,提供你一些意见,稍作参考。你的表达量还是很可以的,就分泌表达而言,完全能够纯化出来。我的实验技术路线如下:以1L的培养液上清为对象,先用阴离子交换层析柱富集,然后脱盐柱除掉部分色素,再直接上样于Ni-NTA上,条件成熟,大半天时间就可完成1L的纯化,我最终1L培养基中获得1.5mg的目的蛋白,纯度在90%以上。
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请教:你的Bacmid是如何提取的,怎么纯化的?转染剂量是否严格遵守操作手册的推荐剂量?你所说的“病毒感染晚期(正常24-72h)可见细胞停止生长、黏附,呈颗粒状外观”能否详细描述一下?不胜感激!!!
菜鸟一只
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不知道coffejumps表达的蛋白有多大?是否是膜蛋白?膜蛋白不好做,蛋白太大不好做。

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深表赞同啊,我就是用bac-to-bac系统表达膜蛋白的,作了一年。一开始也是前面的步骤都没问题,就是最后的western做不出来,一直以为是序列有移码,测序存在问题。反反复复测了很多次结果都不一样,汗啊~~后来才发现是蛋白表达量太低,western没有检测到(因为当时的阳性对照是一直以为表达量应该差不多的蛋白,结果哪知道差那么多!)。最近提高一抗的稀释度4倍,就检测到了,提膜蛋白做纯度就更高了。

这么做下来,也是觉得,转染纯度什么的都不是问题,有的话就可以了。我们也是手工提的。至于细胞状态,我们用的是sf9细胞,一般过夜就一定能贴壁的不错,传代的时候就用吹管吹下就下来了,很容易,不需要用消化液消化的,而且我记得sf9好像应该是半贴壁细胞吧??
感染的迹象:做病毒P1扩增的时候,不是很明显的,也就是细胞一开始还是长的,后来停住,变大变透明的感觉。如果是用高滴度病毒做表达的时候,好的情况(国外一位老师说)应该是像“气球”一样浮起来,然后变大变通透,如果是有要裂掉的那个样子我觉得是养的太久了吧。一般我作的话,病毒扩增都是3天的,表达4天,如果真要表达7天,我在想是不是蛋白都要被水解光了?

感觉做滴度是最麻烦最费时间的事情,很容易污染,不知道大家是不是这样的?要么就是一个噬斑都没,反正成功率不高。但觉得病毒滴度对优化表达条件提高蛋白表达量又是很重要的,不知道有没有什么好建议或是做的好的同志的心得,可以分享一下?那天有看到基因公司在代理BD的滴度测定试剂盒(BacPAK rapid titer kit),2天就可以测完,就是太贵,3700RMB就没几次好用,奢侈啊~~
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相关疾病:
感染
我是用Baculogold 来做蛋白表达的,做了一年多了,始终没有检测的到,细胞是sf9。

我的蛋白是膜蛋白,140kD,国外都表达出来了,但是我用我自己构建的病毒来做,怎么都没有做出来,听说膜蛋白很难表达,我想到底是什么问题?表达量文献上的很高,而我的western 都基本上看不出来。

我所怀疑的各个步骤都没有问题,包括病毒都是由感染性的,MOI试过n多次,我每次感染都是在72h或更长时间,后收细胞的,细胞病变很明显,对于这么大的蛋白,是不是时间短了阿,

不过在细胞的培养方面还是有很多经验的,希望和大家交流,也希望大家能在蛋白表达这方面给我指导,郁闷中
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star#room[使用道具]
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还有,sf9的细胞电泳,你们都是怎么处理细胞的?
我的细胞量不是很多,如果提膜来检测膜蛋白的话,就很少了,我试过跑全细胞电泳,但是结果考染后整条带都兰呼呼的,而且带形很难看,不知道是由于脂太多,还是由于核算的干扰?

你们都是怎么处理细胞的,来检测蛋白的?
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ffooll[使用道具]
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我目前纯化出来的这个蛋白,表达量大约在2-3mg/1*10^8个细胞,还不是很满意。呵呵,这两个酶的效率比较高,放心用!反正后面要鉴定嘛

这个状态怎么控制?谈谈你的经验如何?
放一个星期都可以???晕!细胞破裂死亡不会导致表达蛋白降解吗?
你们通常都表达什么性质的蛋白,稳定性如何,表达膜蛋白成功的例子多么?

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就我自己做的来说吧,扩毒时,一般加毒后到第五天收毒,收毒前如果细胞漂起来的不多,就再等一到两天收毒。表达蛋白就不同了,要摸索时相和加的病毒量,蛋白不同表达时相会不一样。
我自己做的一个分泌型蛋白表达还行,不过我用的培基加有FBS,想试试把血清去掉再做做表达。另做了个膜蛋白90kD左右,表达的量很低,正在郁闷中。
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ffooll[使用道具]
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这么做下来,也是觉得,转染纯度什么的都不是问题,有的话就可以了。我们也是手工提的。至于细胞状态,我们用的是sf9细胞,一般过夜就一定能贴壁的不错,传代的时候就用吹管吹下就下来了,很容易,不需要用消化液消化的,而且我记得sf9好像应该是半贴壁细胞吧??

感染的迹象:做病毒P1扩增的时候,不是很明显的,也就是细胞一开始还是长的,后来停住,变大变透明的感觉。如果是用高滴度病毒做表达的时候,好的情况(国外一位老师说)应该是像“气球”一样浮起来,然后变大变通透,如果是有要裂掉的那个样子我觉得是养的太久了吧。一般我作的话,病毒扩增都是3天的,表达4天,如果真要表达7天,我在想是不是蛋白都要被水解光了?

感觉做滴度是最麻烦最费时间的事情,很容易污染,不知道大家是不是这样的?要么就是一个噬斑都没,反正成功率不高。但觉得病毒滴度对优化表达条件提高蛋白表达量又是很重要的,不知道有没有什么好建议或是做的好的同志的心得,可以分享一下?那天有看到基因公司在代理BD的滴度测定试剂盒(BacPAK rapid titer kit),2天就可以测完,就是太贵,3700RMB就没几次好用,奢侈啊~~

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我也觉得挺好吹的,好像消化液处理对细胞状态会有一些影响的。
滴度一定要做么?我觉得好麻烦,总不想去做。反正表达的时候不是要做时相跟MOI的么?条件摸好了表达的时候用同一个病毒stock不行么?
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windy+++[使用道具]
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我也在用昆虫细胞sf9和baculovirus表达一个蛋白, 蛋白要么是不合histag结合, 要么是没有活力。 试验室里的人说我表达的是分泌型蛋白,他们只用细胞培养上清做分离纯化,可我怀疑上清中蛋白不够多,也许大部分都在细胞里,怎么确定蛋白是分泌表达还是胞浆表达呢, 是不是是由蛋白本身的特性决定的。 另外我对你的纯化过程非常感兴趣,我最近对一个蛋白进行了几次纯化, 过了histag 的bead,还是有很多条带,能不能介绍介绍纯化过程,非常感谢。
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