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标题:【讨论帖】western blotting试验技术讨论

鲇鱼少爷[使用道具]
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做核蛋白的有用GAPDH做内参的吗?
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nut6694[使用道具]
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有哪位高手可以提供一下转膜时的选择标准,比如说:
小于10KDa的建议用多大的电压/电流转多长时间?
10-30KDa的建议用多大的电压/电流转多长时间
以此类推,有没有这样的标准或经验呢?

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我也在学习中,我们做的Caspase-3,17~19KD,说说我们的条件:5%积层胶,12%分离胶,积层胶20mA稳流,跑至溴酚蓝呈一条直线,大约40分钟;分离胶120V稳压,一直到溴酚蓝将至玻璃板底部,大约1.5h。具体时间与电泳液的使用次数有关。
转膜用孔径0.22微米的PVDF膜,半干转,电压10V,转25min,转膜效果还不错。
30KD的Bcl-2,我们用0.45微米的膜,10V,25min。
40,60KD的ERK,AKT,0.45微米PVDF膜,10V,30min。
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nut6694[使用道具]
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我们实验室用5%的脱脂牛奶稀释一抗,配的时候每一毫升抗体加10微升10%的叠氮钠,我们的一抗用好几个月(大约3个月)都可以,大家没有这么用的吗?

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我们也这么用,我们稀释一抗用5%BSA,不过不加叠氮钠,毒性太大,有点怕。放在4度冰箱避免反复冻融,孵一抗也在4度冰箱孵,可以反复使用一个月。并且我觉得用过几次的抗体最好用,不知大家有没有这种感觉。
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压片心得:
一开始老是掌握不好,不过现在总结的经验是:
进去荧光很亮,三秒钟搞定
如果隐约可见,10秒钟
如果没看到,第一张片子30s一般都会压出条带,实在不行,第二张要3分钟数200下。
还有二抗是可以重复使用,以前不敢,不过试过了蛮好了哈哈,省钱啊。
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XYZQ[使用道具]
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实验心得:

1.如果采用过夜封闭方法,时间比较长,但是一定要注意封闭液是否盖过了全部的膜!

2.封闭时最好使用BSA或专用的脱脂奶粉进行封闭,虽然贵点,但还是有个好点的结果!

3.转膜时的温度比较重要,最好保持在10度以下,可以用冰浴,也可以在转膜液中放入合适的事先准备的冰袋(-70度>3小时)(Bio-Rad),这样既可以降温又可以节约Buffer
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我佛慈悲[使用道具]
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自己做了几十个wb,说下体会
1,样品:样品处理很重要,如果样品处理不好,导致目的蛋白丢失,你后面再怎么wb,也出不来结果,所以蛋白获得,这部非常重要。
2,灌胶:千万不要有杂质,这样你的带就容易微笑,灌胶加梳子后,可以再梳子上方再加点浓缩胶,这样可以减少胶凝后产生的塌陷
3,上样,样品得煮,而且loadingbuffer,也要配好,别出现颗粒,而且若有多余孔,得用loading buffer 补齐,要不带会往两边开
4,跑胶,理论上电压越小,分离得越好。我一般,浓缩80,分离120。根据实际情况而定吧,自己摸索。
5,转膜,我用的是半干转,剪裁的时候戴手套,不要摸膜,也不要用油性笔去做记号,裁滤纸,膜。三明治各层之间不要有起泡,
6,封闭,5%的脱脂或者3%的bsa ,室温两小时,或者浓度小点4度过夜
7,孵育,很重要的步骤,我一般将96孔板的盖子上面蒙层保鲜膜,再将膜放上去,然后直接将抗体滴在上面。一抗,二抗,比例得自己摸索,一般推荐比例内稀释。
8,洗脱,一般10min*3次,TBST
9,显影,做了上面这么多,就为了好的曝光结果,多花点心思,曝光多几张,你会有收获的,园里有曝光相关问题的帖子,大家搜索看
就这么多了,谁有好的拿出来分享吧
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菠萝喵[使用道具]
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比较一下western所用的几种膜特性及优缺点:NC膜 尼龙膜 PVDF膜


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ukonptp[使用道具]
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每次做出来都是微笑条带,为什么呢?
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ukonptp[使用道具]
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请教各位大侠:Tween20稀释成20%的后4°能放多久啊?

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像Tween20,TritonX100等非离子型去垢剂我们实验室均为室温储存,时间不超过2个月,时间久了就会失效的,切记!!!
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ukonptp[使用道具]
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我们实验室用5%的脱脂牛奶稀释一抗,配的时候每一毫升抗体加10微升10%的叠氮钠,我们的一抗用好几个月(大约3个月)都可以,大家没有这么用的吗?

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如果要求较为严格的话,其实一抗配好后只可以使用一次的,因为会污染膜上脱落的小分子蛋白等,另外,抗体成分会随着杂交次数的增加而变化,因为PVDF膜以及膜上转移的蛋白会非特异地吸附很多抗体成分,还有就是抗体自身会发生一定程度的降解。

我们室通常使用抗体2-5次就更换(第一次通常背景较高),最好不超过1个月
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